| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 缩略词一览表 | 第12-13页 |
| 第一章 综述 | 第13-20页 |
| 1.1 引言 | 第13-14页 |
| 1.2 胚胎神经前体细胞的发育进程 | 第14-17页 |
| 1.2.1 胚胎神经发生的起源 | 第14-15页 |
| 1.2.2 APs特征性的分裂方式-周期性核运动 | 第15-16页 |
| 1.2.3 胚胎脑的分层结构 | 第16-17页 |
| 1.3 OPs对胚胎神经细胞发育的影响 | 第17-19页 |
| 1.4 本研究的意义、内容和创新点 | 第19-20页 |
| 第二章 DZN暴露对多种酶活力的影响 | 第20-33页 |
| 前言 | 第20-21页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-23页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.1.2 仪器与试剂 | 第21页 |
| 2.1.3 试剂配制 | 第21-23页 |
| 2.2 方法 | 第23-28页 |
| 2.2.1 实验动物分组、药物处理及胚胎样本采集 | 第23页 |
| 2.2.2 酶活性测定 | 第23-28页 |
| 2.3 实验结果 | 第28-31页 |
| 2.3.1 DZN暴露对母鼠全血及胚胎鼠脑胆碱酯酶活力的影响 | 第28-29页 |
| 2.3.2 DZN暴露对胚胎鼠脑Caspase酶活力的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.3 DNZ暴露对胚胎鼠脑总SOD活性的影响 | 第30-31页 |
| 2.4 讨论 | 第31-33页 |
| 第三章 DZN对顶端神经前体细胞INM的影响 | 第33-44页 |
| 前言 | 第33页 |
| 3.1 实验材料 | 第33-36页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第33页 |
| 3.1.2 仪器与试剂 | 第33-34页 |
| 3.1.3 试剂配制 | 第34-36页 |
| 3.2 方法 | 第36-40页 |
| 3.2.1 实验动物分组、药物处理及胚胎采集与固定 | 第36页 |
| 3.2.2 石蜡切片 | 第36-37页 |
| 3.2.3 Brdu免疫组化 | 第37-39页 |
| 3.2.4 脑室定位 | 第39页 |
| 3.2.5 统计分析 | 第39-40页 |
| 3.3 实验结果 | 第40-43页 |
| 3.3.1 DZN暴露对神经前体细胞周期性核移行的影响-1hr | 第40-41页 |
| 3.3.2 DZN暴露对神经前体细胞周期性核移行的影响-3hr | 第41-42页 |
| 3.3.3 DZN暴露对神经前体细胞周期性核移行的影响-6hr | 第42-43页 |
| 3.4 讨论 | 第43-44页 |
| 第四章 DZN暴露对胚胎神经前体细胞发育衍变的影响 | 第44-59页 |
| 前言 | 第44页 |
| 4.1 实验材料 | 第44-46页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第44页 |
| 4.1.2 仪器与试剂 | 第44-45页 |
| 4.1.3 试剂配制 | 第45-46页 |
| 4.2 方法 | 第46-49页 |
| 4.2.1 实验动物分组、药物处理及胚胎采集与固定 | 第46页 |
| 4.2.2 石蜡切片 | 第46页 |
| 4.2.3 Pax6、Tbr2、Tbr1免疫组化 | 第46-47页 |
| 4.2.4 脑室定位 | 第47-48页 |
| 4.2.5 统计分析 | 第48-49页 |
| 4.3 实验结果 | 第49-58页 |
| 4.3.1 DZN对E14 APs、BPs和神经元的影响 | 第49-52页 |
| 4.3.2 DZN对E16 APs、BPs和神经元的影响 | 第52-55页 |
| 4.3.3 DZN对E18 APs、BPs和神经元的影响 | 第55-58页 |
| 4.4 讨论 | 第58-59页 |
| 第五章 总结与展望 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 读研期间发表的学术论文 | 第70页 |
