| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 主要缩略语 | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-26页 |
| 1 植物多糖简介 | 第10页 |
| 2 植物多糖研究进展 | 第10-17页 |
| 2.1 植物多糖的提取方法 | 第10-12页 |
| 2.2 植物多糖的分离纯化 | 第12-14页 |
| 2.3 植物多糖的构效关系 | 第14-15页 |
| 2.4 植物多糖的功能性质 | 第15-17页 |
| 3 国内外小麦麸皮多糖的研究现状 | 第17-22页 |
| 3.1 小麦麸皮多糖提取方法 | 第18-19页 |
| 3.2 小麦麸皮多糖的纯化 | 第19-20页 |
| 3.3 小麦麸皮多糖的功能性研究 | 第20-22页 |
| 4 植物多糖激活巨噬细胞的信号通路 | 第22-23页 |
| 4.1 Toll样受体介导的信号通路 | 第22页 |
| 4.2 CD14及CR3介导的信号通路 | 第22页 |
| 4.3 SR介导的信号通路 | 第22-23页 |
| 4.4 MR介导的信号通路 | 第23页 |
| 4.5 其他受体介导的信号通路 | 第23页 |
| 5 本论文的研究内容和意义 | 第23-26页 |
| 5.1 研究背景及意义 | 第24页 |
| 5.2 主要研究内容 | 第24-25页 |
| 5.3 本论文的创新之处 | 第25-26页 |
| 第二章 不同提取方法对小麦麸皮多糖化学组分及免疫活性的影响 | 第26-41页 |
| 1 材料与方法 | 第26-31页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第26页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第26-27页 |
| 1.3 方法 | 第27-31页 |
| 1.4 数据分析 | 第31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-39页 |
| 2.1 不同提取方法WBP提取率比较 | 第31-32页 |
| 2.2 小麦麸皮残渣的微观形态 | 第32-33页 |
| 2.3 糖醛酸、硫酸根的含量比较 | 第33-34页 |
| 2.4 蛋白质含量的比较 | 第34-35页 |
| 2.5 单糖组分分析 | 第35-37页 |
| 2.6 细胞毒性的影响 | 第37-38页 |
| 2.7 WBP对RAW264.7细胞分泌NO的影响 | 第38页 |
| 2.8 不同提取方法WBP对RAW264.7细胞COX-2和iNOS蛋白表达的影响 | 第38-39页 |
| 3 讨论 | 第39-40页 |
| 4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第三章 小麦麸皮多糖免疫调节分子机理 | 第41-53页 |
| 1 材料与方法 | 第41-45页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第41-42页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第42页 |
| 1.3 动物 | 第42页 |
| 1.4 方法 | 第42-45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-50页 |
| 2.1 WBP对RAW264.7细胞活性及分泌细胞因子的影响 | 第45-46页 |
| 2.2 WBP对RAW264.7细胞因子基因表达的影响 | 第46-47页 |
| 2.3 WBP对TRL4介导的信号通路的影响 | 第47-49页 |
| 2.4 CTX处理小鼠中WBP对脾脏、肝脏指数及细胞因子分泌的影响 | 第49-50页 |
| 3 讨论 | 第50-52页 |
| 4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 小麦麸皮多糖分离纯化及结构和免疫活性研究 | 第53-66页 |
| 1 材料与方法 | 第53-55页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第53页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第53-54页 |
| 1.3 方法 | 第54-55页 |
| 2 结果与分析 | 第55-64页 |
| 2.1 小麦麸皮多糖的分离纯化 | 第56-58页 |
| 2.2 分子量的测定 | 第58-59页 |
| 2.3 单糖组分分析 | 第59-61页 |
| 2.4 红外光谱分析 | 第61-62页 |
| 2.5 体外细胞免疫活性 | 第62-64页 |
| 3 讨论 | 第64页 |
| 4 本章小结 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 攻读硕士学位期间完成的论文 | 第78-79页 |
