成人跖疣HPV型的检测及与临床特征关系的研究
| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1.引言 | 第10-13页 |
| 2.材料与方法 | 第13-25页 |
| 2.1 临床资料 | 第13-15页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第13页 |
| 2.1.2 研究对象纳入和排除标准 | 第13-14页 |
| 2.1.3 签署知情同意书及基线资料采集 | 第14-15页 |
| 2.2 方法 | 第15-24页 |
| 2.2.1 样本采集 | 第15页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第15页 |
| 2.2.3 DNA提取 | 第15-16页 |
| 2.2.3.1 主要仪器、试剂、耗材 | 第15-16页 |
| 2.2.3.2 实验步骤 | 第16页 |
| 2.2.4 PCR扩增和产物鉴定 | 第16-18页 |
| 2.2.4.1 仪器、耗材、试剂 | 第16-17页 |
| 2.2.4.2 扩增反应体系 | 第17-18页 |
| 2.2.5 PCR产物电泳鉴定 | 第18-20页 |
| 2.2.5.1 电泳缓冲液 50*TAE配制 | 第18页 |
| 2.2.5.2 反应条件 | 第18页 |
| 2.2.5.3 引物序列 | 第18页 |
| 2.2.5.4 琼脂糖溶胶配置 | 第18-19页 |
| 2.2.5.5 电泳 | 第19页 |
| 2.2.5.6 凝胶成像仪照相并保存 | 第19-20页 |
| 2.2.6 PCR产物纯化 | 第20-21页 |
| 2.2.6.1 试剂、仪器、耗材 | 第20页 |
| 2.2.6.2 PCR产物纯化 | 第20-21页 |
| 2.2.7 纯化产物测序 | 第21-22页 |
| 2.2.7.1 反应条件 | 第21页 |
| 2.2.7.2 反应体系 | 第21页 |
| 2.2.7.3 测序反应纯化 | 第21-22页 |
| 2.2.8 多重感染的HPV型确定:TA克隆 | 第22-24页 |
| 2.2.8.1 仪器、试剂、耗材 | 第22-23页 |
| 2.2.8.2 感受态细胞的制备与转化 | 第23-24页 |
| 2.2.8.3 挑取单克隆 | 第24页 |
| 2.2.8.4 克隆鉴定 | 第24页 |
| 2.2.9 测序结果的验证 | 第24页 |
| 2.3 统计分析 | 第24-25页 |
| 3.结果 | 第25-31页 |
| 3.1 基本情况 | 第25-26页 |
| 3.2 HPV分型检测结果 | 第26-29页 |
| 3.3 HPV属和型与患者临床特征的关系 | 第29-31页 |
| 4.讨论 | 第31-33页 |
| 5.研究意义 | 第33页 |
| 6.优势和不足 | 第33-34页 |
| 7.参考文献 | 第34-37页 |
| 附录 | 第37-38页 |
| 致谢 | 第38-39页 |
| 综述 HPV衣壳蛋白L1和L2的结构及功能简述 | 第39-54页 |
| 1.前言 | 第39-47页 |
| 1.1 主要衣壳蛋白L1的超微结构 | 第40-41页 |
| 1.2 L1在病毒生命周期中的生物学功能 | 第41-42页 |
| 1.3 L1在疫苗中的应用 | 第42-43页 |
| 1.4 L1蛋白核酸序列用于HPV分型 | 第43页 |
| 1.5 次要衣壳蛋白L2的结构 | 第43-44页 |
| 1.6 L2在侵入宿主细胞中的作用 | 第44-45页 |
| 1.7 L2在PVs囊泡转运中的作用 | 第45页 |
| 1.8 L2在核内体逃逸中的作用 | 第45-46页 |
| 1.9 L2在入核中的作用 | 第46页 |
| 1.10 L2引起的免疫反应 | 第46-47页 |
| 1.11 L1与L2相互联系 | 第47页 |
| 2.结论 | 第47-48页 |
| 3.参考文献 | 第48-54页 |
