| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 1 前言 | 第8-18页 |
| 1.1 转基因玉米概述 | 第8-10页 |
| 1.1.1 转基因玉米的导入基因和导入方法 | 第8页 |
| 1.1.2 转基因玉米的检测技术 | 第8页 |
| 1.1.3 转基因玉米的安全性评价 | 第8-10页 |
| 1.2 酚酸和黄酮概述 | 第10-13页 |
| 1.2.1 酚酸和黄酮的定义及分布 | 第10页 |
| 1.2.2 酚酸和黄酮的结构及分类 | 第10-11页 |
| 1.2.3 酚酸和黄酮的作用及功能 | 第11-12页 |
| 1.2.4 酚酸和黄酮的提取方法 | 第12-13页 |
| 1.2.5 酚酸和黄酮的纯化方法 | 第13页 |
| 1.3 代谢组学概述 | 第13-16页 |
| 1.3.1 代谢组学简介 | 第13-14页 |
| 1.3.2 代谢组学的研究策略 | 第14页 |
| 1.3.3 代谢组学的分析技术 | 第14-15页 |
| 1.3.4 代谢组学的研究流程 | 第15-16页 |
| 1.3.5 代谢组学的应用和挑战 | 第16页 |
| 1.4 课题研究的目的、意义及主要研究内容 | 第16-18页 |
| 1.4.1 课题研究的目的及意义 | 第16-17页 |
| 1.4.2 课题研究的主要内容 | 第17-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-26页 |
| 2.1 实验药品与器材 | 第18-20页 |
| 2.1.1 酚酸和黄酮标准品 | 第18-19页 |
| 2.1.2 化学试剂与药品 | 第19页 |
| 2.1.3 仪器设备与材料 | 第19-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 酚酸和黄酮标准品储备液及工作液的配制 | 第20-21页 |
| 2.2.3 样品前处理方法 | 第21页 |
| 2.2.4 样品的测定方法 | 第21-23页 |
| 2.2.5 LC-MS/MS的定性及定量方法 | 第23页 |
| 2.2.6 基质效应评价 | 第23页 |
| 2.3 转基因和非转基因玉米的代谢物分析 | 第23-26页 |
| 2.3.1 代谢组学数据预处理 | 第23-24页 |
| 2.3.2 代谢组学数据分析 | 第24-26页 |
| 3 结果与讨论 | 第26-68页 |
| 3.1 LC-MS/MS条件的优化 | 第26-50页 |
| 3.1.1 质谱条件的优化 | 第26-38页 |
| 3.1.2 液相条件的优化 | 第38-50页 |
| 3.2 固相萃取条件的优化 | 第50-55页 |
| 3.2.1 固相萃取柱的选择 | 第50-51页 |
| 3.2.2 固相萃取上样液pH的优化 | 第51-52页 |
| 3.2.3 固相萃取淋洗液比例的优化 | 第52-53页 |
| 3.2.4 固相萃取淋洗液体积的优化 | 第53-54页 |
| 3.2.5 固相萃取洗脱液体积的优化 | 第54-55页 |
| 3.3 样品提取条件的优化 | 第55-57页 |
| 3.3.1 提取溶剂选择 | 第55-56页 |
| 3.3.2 提取溶剂比例的优化 | 第56页 |
| 3.3.3 料液比的优化 | 第56-57页 |
| 3.3.4 超声时间的优化 | 第57页 |
| 3.4 方法性能评价 | 第57-61页 |
| 3.4.1 方法的分析特征量 | 第58-59页 |
| 3.4.2 基质效应评价 | 第59页 |
| 3.4.3 基质加标回收实验 | 第59-61页 |
| 3.5 实际样品的测定 | 第61页 |
| 3.6 转基因和非转基因玉米的代谢物分析 | 第61-68页 |
| 3.6.1 变异范围分析 | 第61-62页 |
| 3.6.2 热图分析 | 第62-63页 |
| 3.6.3 主成分分析(PCA) | 第63-64页 |
| 3.6.4 偏最小二乘判别分析(PLS-DA) | 第64-66页 |
| 3.6.5 正交偏最小二乘判别分析(OPLS-DA) | 第66-67页 |
| 3.6.6 差异代谢物的确定 | 第67-68页 |
| 4 结论 | 第68-69页 |
| 5 展望 | 第69-70页 |
| 6 参考文献 | 第70-76页 |
| 7 攻读硕士期间发表论文情况 | 第76-77页 |
| 8 致谢 | 第77页 |