| 摘要 | 第10-13页 |
| ABSTRACT | 第13-16页 |
| 符号与缩略语 | 第17-19页 |
| 前言 | 第19-21页 |
| 第一篇 文献综述 | 第21-56页 |
| 第一章 脱氧雪腐镰刀菌烯醇研究进展 | 第22-38页 |
| 1 脱氧雪腐镰刀菌烯醇简介 | 第22-23页 |
| 1.1 脱氧雪腐镰刀菌烯醇的化学结构 | 第22页 |
| 1.2 DON的产生条件 | 第22-23页 |
| 2 DON的毒性作用 | 第23-24页 |
| 2.1 DON对细胞的毒性作用 | 第23页 |
| 2.2 DON对动物的毒性作用 | 第23-24页 |
| 3 DON的样品的分析 | 第24-29页 |
| 3.1 DON样品的提取 | 第24-25页 |
| 3.2 DON样品的纯化 | 第25-26页 |
| 3.3 DON样品的分析方法 | 第26-29页 |
| 4 去毒及降解研究进展 | 第29-31页 |
| 4.1 活性炭 | 第29页 |
| 4.2 硅铝酸盐 | 第29-30页 |
| 4.3 其它吸附剂 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-38页 |
| 第二章 猪繁殖与呼吸障碍综合征研究进展 | 第38-48页 |
| 1 生物学特性 | 第38-39页 |
| 2 基因组结构及编码蛋白 | 第39页 |
| 3 流行病学与临床症状 | 第39-40页 |
| 4 诊断方法 | 第40-41页 |
| 5 PRRS感染的防控 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 第三章 流式细胞术在真菌毒素分析中的应用 | 第48-56页 |
| 1 流式细胞术概述 | 第48页 |
| 2 真菌毒素概述 | 第48-49页 |
| 3 细胞的生理特性 | 第49-50页 |
| 3.1 细胞生长及存活 | 第49页 |
| 3.2 新陈代谢活性 | 第49-50页 |
| 3.3 线粒体膜电位 | 第50页 |
| 3.4 膜完整性 | 第50页 |
| 4 流式细胞术的应用 | 第50-53页 |
| 参考文献 | 第53-56页 |
| 第二篇 试验硏究 | 第56-123页 |
| 第四章 小麦样品中DON的分离纯化 | 第57-73页 |
| 1 材料和方法 | 第57-61页 |
| 1.1 菌株 | 第57页 |
| 1.2 主要试剂 | 第57页 |
| 1.3 主要器材 | 第57-58页 |
| 1.4 培养基的配制 | 第58页 |
| 1.5 DON粗提物的制备 | 第58-59页 |
| 1.6 硅胶柱层析分离DON | 第59-60页 |
| 1.7 制备型HPLC纯化DON | 第60页 |
| 1.8 分析型HPLC检测DON | 第60页 |
| 1.9 DON的鉴定 | 第60-61页 |
| 2 结果 | 第61-67页 |
| 2.1 TLC方法确定分离物 | 第61页 |
| 2.2 TLC方法确定洗脱液 | 第61-62页 |
| 2.3 制备型HPLC纯化DON | 第62-63页 |
| 2.4 分析型HPLC检测DON | 第63-64页 |
| 2.5 质谱结构鉴定 | 第64-65页 |
| 2.6 核磁共振鉴定 | 第65-66页 |
| 2.7 免疫学活性鉴定 | 第66-67页 |
| 2.8 DON产量及纯度分析 | 第67页 |
| 3 讨论 | 第67-70页 |
| 3.1 影响DON产量的主要因素 | 第67-68页 |
| 3.2 DON样品的提取 | 第68页 |
| 3.3 DON样品的纯化 | 第68-69页 |
| 3.4 DON样品的鉴定 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-73页 |
| 第五章 DON对PRRSV在体外复制的影响 | 第73-91页 |
| 1 材料和方法 | 第73-77页 |
| 1.1 细胞与毒株 | 第73页 |
| 1.2 试剂及器材 | 第73-74页 |
| 1.3 不同滴度病毒对细胞的影响 | 第74页 |
| 1.4 MTT检测细胞活力 | 第74-75页 |
| 1.5 细胞LDH活性检测 | 第75页 |
| 1.6 PRRSV抗原量检测 | 第75-76页 |
| 1.7 PRRSV病毒滴度测定 | 第76页 |
| 1.8 PRRSV N蛋白的Western blotting检测 | 第76页 |
| 1.9 数据分析 | 第76-77页 |
| 2 结果 | 第77-85页 |
| 2.1 细胞形态的影响 | 第77-78页 |
| 2.2 DON对细胞活力的影响 | 第78-79页 |
| 2.3 DON对感染PRRSV的细胞形态的影响 | 第79-80页 |
| 2.4 DON对感染PRRSV的细胞活力的影响 | 第80-81页 |
| 2.5 DON对细胞LDH活性的影响 | 第81-82页 |
| 2.6 DON对感染PRRSV的细胞LDH活性的影响 | 第82页 |
| 2.7 DON对PRRSV抗原量的影响 | 第82-83页 |
| 2.8 DON对PRRSV抗原滴度的影响 | 第83-84页 |
| 2.9 DON对PRRSV N蛋白复制的影响 | 第84-85页 |
| 3 讨论 | 第85-87页 |
| 3.1 DON的毒理学作用 | 第85页 |
| 3.2 DON的免疫调节作用 | 第85-86页 |
| 3.3 DON对病毒感染的影响 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-91页 |
| 第六章 DON对感染PRRSV细胞的细胞因子及细胞凋亡的影响 | 第91-105页 |
| 1 材料和方法 | 第91-94页 |
| 1.1 实验动物 | 第91页 |
| 1.2 病毒 | 第91页 |
| 1.3 主要试剂 | 第91页 |
| 1.4 主要器材 | 第91-92页 |
| 1.5 PAM细胞的制备 | 第92页 |
| 1.6 细胞因子mRNA表达试验 | 第92-94页 |
| 1.7 细胞凋亡检测 | 第94页 |
| 2 结果 | 第94-98页 |
| 2.1 IFN-α mRNA表达水平的变化 | 第94-95页 |
| 2.2 IFN-β mRNA表达水平的变化 | 第95页 |
| 2.3 IL-1β mRNA表达水平的变化 | 第95-96页 |
| 2.4 IL-6 mRNA表达水平的变化 | 第96-97页 |
| 2.5 DON引起感染PRRSV的PAM凋亡的检测 | 第97-98页 |
| 3 讨论 | 第98-100页 |
| 3.1 抗病毒细胞因子的调节作用 | 第98页 |
| 3.2 炎性细胞因子的调节作用 | 第98-99页 |
| 3.3 细胞凋亡的调节作用 | 第99-100页 |
| 参考文献 | 第100-105页 |
| 第七章 DON对PRRSV体内感染的影响 | 第105-123页 |
| 1 材料和方法 | 第105-110页 |
| 1.1 毒株及真菌毒素 | 第105页 |
| 1.2 主要试剂与仪器 | 第105页 |
| 1.3 实验动物 | 第105页 |
| 1.4 饲养管理 | 第105-107页 |
| 1.5 体重、直肠温度测量 | 第107页 |
| 1.6 样本的采集 | 第107页 |
| 1.7 血液及肺脏样本中PRRSV病毒载量的检测 | 第107-109页 |
| 1.8 免疫组化检测肺组织中PRRSV | 第109-110页 |
| 1.9 血清中PRRSV抗体检测 | 第110页 |
| 1.10 数据处理 | 第110页 |
| 2 结果 | 第110-116页 |
| 2.1 ORF 7重组质粒的构建及鉴定 | 第110-111页 |
| 2.2 仔猪生长性能的变化 | 第111-113页 |
| 2.3 仔猪体温的变化 | 第113页 |
| 2.4 血液及肺脏样本中PRRSV病毒载量 | 第113-114页 |
| 2.5 免疫组化检测肺组织中PRRSV | 第114-115页 |
| 2.6 血清中PRRSV抗体检测 | 第115-116页 |
| 3 讨论 | 第116-119页 |
| 3.1 DON对仔猪生产性能的影响 | 第116-117页 |
| 3.2 DON对PRRSV病毒载量的影响 | 第117页 |
| 3.3 DON对PRRSV抗体应答的影响 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-123页 |
| 全文结论 | 第123-125页 |
| 论文创新点 | 第125-127页 |
| 附录 | 第127-133页 |
| 致谢 | 第133-135页 |
| 攻读博士期间发表论文 | 第135页 |
