| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-15页 |
| 缩略语中英文对照表 | 第15-17页 |
| 文献综述 | 第17-97页 |
| 第一章 卵泡的形成、发育和闭锁过程及其调控 | 第17-55页 |
| 1 卵泡发育的动态过程 | 第17-26页 |
| ·卵泡的形成过程 | 第17-19页 |
| ·卵泡的发育过程 | 第19-22页 |
| ·卵泡的闭锁过程 | 第22-25页 |
| ·卵泡生长发育过程的调控 | 第25-26页 |
| 2 卵泡闭锁的调控机制研究 | 第26-43页 |
| ·卵泡闭锁与颗粒细胞凋亡 | 第26-34页 |
| ·卵泡闭锁的生殖激素调控 | 第34-37页 |
| ·卵泡闭锁的凋亡相关蛋白调控 | 第37-39页 |
| ·卵泡闭锁的生长因子调控 | 第39-40页 |
| ·卵泡闭锁的细胞因子调控 | 第40-42页 |
| ·FSH调节卵泡闭锁和颗粒细胞凋亡的信号通路 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-55页 |
| 第二章 FOXO转录因子的功能研究进展 | 第55-97页 |
| 1 FOXO转录因子概述 | 第55-60页 |
| ·Foxo转录因子的命名与分类 | 第55-56页 |
| ·Foxo转录因子的结构 | 第56-59页 |
| ·Foxo家族成员的基因定位与组织表达谱 | 第59-60页 |
| 2 FOXO转录因子的翻译后修饰 | 第60-66页 |
| ·磷酸化 | 第60-64页 |
| ·乙酰化 | 第64-65页 |
| ·泛素化 | 第65-66页 |
| 3 Foxo转录因子的功能 | 第66-82页 |
| ·Foxo与细胞生理 | 第67-76页 |
| ·Foxo与疾病和衰老 | 第76-80页 |
| ·Foxo与氧化应激和细胞损伤 | 第80-81页 |
| ·Foxo与卵泡发育 | 第81-82页 |
| 4 FOXO1在卵泡闭锁中的研究现状和研究前景 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-97页 |
| 试验研究 | 第97-221页 |
| 第三章 FOXO1对氧化应激引起的小鼠卵巢颗粒细胞凋亡的影响 | 第97-157页 |
| 摘要 | 第97页 |
| ABSTRACT | 第97-98页 |
| 前言 | 第98-101页 |
| 1 材料方法 | 第101-122页 |
| ·试验动物与体内ROS的诱导 | 第101页 |
| ·小鼠组织样的分类与收集 | 第101-102页 |
| ·细胞内ROS的测定 | 第102-103页 |
| ·组织内ROS的测定 | 第103-105页 |
| ·小鼠颗粒细胞的原代培养 | 第105页 |
| ·质粒的获取 | 第105-108页 |
| ·颗粒细胞的转染与处理 | 第108-109页 |
| ·卵巢石蜡切片的制备 | 第109-110页 |
| ·TUNEL染色 | 第110-111页 |
| ·Western Blot分析 | 第111-115页 |
| ·颗粒细胞总RNA的提取 | 第115-116页 |
| ·反转录cDNA的合成 | 第116-117页 |
| ·实时荧光定量PCR(Quantitative Real Time PCR,qRT-PCR) | 第117-119页 |
| ·免疫组化 | 第119-120页 |
| ·颗粒细胞的免疫荧光染色 | 第120-122页 |
| ·数据分析 | 第122页 |
| 2 试验结果 | 第122-143页 |
| ·给小鼠注射氧化剂3-NP后引起卵泡中MGC的凋亡 | 第122-123页 |
| ·氧化应激会影响小鼠卵泡MGC中Foxo家族成员的表达 | 第123-127页 |
| ·氧化应激可诱导体外培养MGC的凋亡 | 第127-131页 |
| ·体外培养MGC中Foxo1的表达受氧化应激诱导 | 第131-134页 |
| ·在MGC中超表达Foxo1能引起促凋亡基因的表达上调 | 第134-136页 |
| ·敲减Foxo1表达可阻断H_2O_2诱导的MGC凋亡 | 第136-140页 |
| ·胰岛素能抑制H_2O_2诱导的MGC凋亡 | 第140-143页 |
| 3 讨论 | 第143-150页 |
| 参考文献 | 第150-157页 |
| 第四章 FOXO1参与了FSH挽救小鼠颗粒细胞凋亡的调控 | 第157-221页 |
| 摘要 | 第157页 |
| ABSTRACT | 第157-158页 |
| 前言 | 第158-160页 |
| 1. 材料方法 | 第160-183页 |
| ·试验动物的处理 | 第160-161页 |
| ·细胞培养 | 第161-162页 |
| ·细胞的处理与转染 | 第162-163页 |
| ·胞内ROS的测定 | 第163页 |
| ·caspases活性测定 | 第163-165页 |
| ·Western blotting | 第165-166页 |
| ·qRT-PCR检测 | 第166-167页 |
| ·免疫荧光 | 第167-168页 |
| ·HE染色 | 第168-169页 |
| ·TUNEL染色 | 第169页 |
| ·蛋白激酶活性测定 | 第169-170页 |
| ·含小鼠Foxo1基因启动子的荧光素酶报告质粒的构建 | 第170-175页 |
| ·小鼠Foxo1基因启动子FRE位点突变质粒的构建 | 第175-179页 |
| ·荧光素酶报告基因测定 | 第179-180页 |
| ·染色质免疫共沉淀 | 第180-183页 |
| ·数据分析 | 第183页 |
| 2. 试验结果 | 第183-208页 |
| ·FSH抑制了小鼠卵巢优势卵泡中MGC的凋亡 | 第183-184页 |
| ·FSH降低了卵巢MGC中Foxo1的表达 | 第184-189页 |
| ·FSH抑制了体外培养MGC的凋亡 | 第189-194页 |
| ·FSH能下调体外培养MGC中Foxo1的表达 | 第194-195页 |
| ·FSH可通过PKA-PI3K-AKT-Foxo1信号轴促进MGC的存活 | 第195-199页 |
| ·Foxo1的组成型激活抵消了FSH对MGC凋亡的抑制作用 | 第199-202页 |
| ·MGC中Foxo1的自身正反馈调节 | 第202-208页 |
| 3. 讨论 | 第208-213页 |
| 参考文献 | 第213-221页 |
| 全文结论 | 第221-223页 |
| 创新 | 第223-225页 |
| 致谢 | 第225-227页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第227-229页 |
| 附录 | 第229-238页 |
| 一 主要试剂与仪器 | 第229-231页 |
| 二 常用溶液的配制 | 第231-238页 |
