| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-8页 |
| 1 文献综述 | 第8-16页 |
| ·猕猴桃的研究价值 | 第8-9页 |
| ·猕猴桃介绍 | 第8页 |
| ·猕猴桃果实着色与品质的研究意义 | 第8-9页 |
| ·果实花青苷积累的研究动态 | 第9-14页 |
| ·花青苷代谢途径 | 第9-10页 |
| ·影响花青苷合成和积累的因素 | 第10-12页 |
| ·酶 | 第10页 |
| ·激素 | 第10-11页 |
| ·光照 | 第11页 |
| ·温度 | 第11页 |
| ·糖 | 第11页 |
| ·pH | 第11-12页 |
| ·花青苷生物合成途径中的基因调控 | 第12-14页 |
| ·结构基因 | 第12-13页 |
| ·调节基因 | 第13-14页 |
| ·猕猴桃果肉色素代谢的研究进展 | 第14-15页 |
| ·研究内容与目标 | 第15-16页 |
| 2 ‘红阳’、‘华特’猕猴桃果实花青苷含量测定 | 第16-20页 |
| ·材料与方法 | 第16-17页 |
| ·试验材料 | 第16页 |
| ·植物材料 | 第16页 |
| ·仪器和标准样品 | 第16页 |
| ·试验方法 | 第16-17页 |
| ·果实花青苷的提取 | 第16-17页 |
| ·操作条件 | 第17页 |
| ·操作方法 | 第17页 |
| ·数据分析 | 第17页 |
| ·结果与分析 | 第17-19页 |
| ·讨论 | 第19-20页 |
| 3 MYB 转录因子克隆及生物学分析 | 第20-35页 |
| ·材料与方法 | 第20-28页 |
| ·试验所用材料 | 第20-21页 |
| ·试验材料 | 第20-21页 |
| ·仪器设备 | 第21页 |
| ·化学试剂 | 第21页 |
| ·试验方法 | 第21-28页 |
| ·总 RNA 的提取 | 第21-22页 |
| ·RNA 质量检测 | 第22页 |
| ·cDNA 的合成 | 第22页 |
| ·大肠杆菌 TG1 感受态细胞的制备 | 第22页 |
| ·核心序列片段扩增 | 第22-23页 |
| ·核心片段克隆 | 第23-25页 |
| ·5′RACE 和 3′RACE | 第25-27页 |
| ·3′及 5′RACE 目的片段的回收、克隆 | 第27-28页 |
| ·MYB 基因全长的分离 | 第28页 |
| ·目的片段的回收、克隆 | 第28页 |
| ·MYB 基因生物信息学分析 | 第28页 |
| ·结果与分析 | 第28-33页 |
| ·RNA 质量检测 | 第28-29页 |
| ·核心 cDNA 片段的克隆 | 第29-30页 |
| ·MYB 基因全长 cDNA 序列的分离 | 第30页 |
| ·MYB 基因全长 cDNA 生物信息学分析 | 第30-33页 |
| ·讨论 | 第33-35页 |
| 4 ‘红阳’、‘华特’猕猴桃 MYB 转录因子表达分析 | 第35-39页 |
| ·材料与方法 | 第35页 |
| ·试验材料 | 第35页 |
| ·试验方法 | 第35页 |
| ·数据分析 | 第35页 |
| ·结果与分析 | 第35-38页 |
| ·引物特异性分析 | 第35-37页 |
| ·MYB 基因的相对表达水平测定 | 第37-38页 |
| ·讨论 | 第38-39页 |
| 5 小结与展望 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-45页 |
| 缩略词表 | 第45-47页 |
| 个人简介 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |