| 致谢 | 第1-15页 |
| 摘要 | 第15-19页 |
| ABSTRACT | 第19-24页 |
| 英文缩略语表 | 第24-27页 |
| 第一章 绪论 | 第27-48页 |
| 1 仔猪早期断奶对胃肠道的影响 | 第27-30页 |
| ·胃肠道pH的变化 | 第27-28页 |
| ·胃肠道结构的变化 | 第28-29页 |
| ·胃肠道消化酶活力的变化 | 第29页 |
| ·肠道微生物区系变化 | 第29-30页 |
| 2 血液游离氨基酸在评价机体营养状况及指导营养支持中的意义 | 第30-31页 |
| 3 谷氨酰胺的生物学功能 | 第31-36页 |
| ·谷氨酰胺的化学结构和来源 | 第31-32页 |
| ·谷氨酰胺在肠道中作为主要的能源物质 | 第32-33页 |
| ·谷氨酰胺对肠道功能的调节作用 | 第33页 |
| ·谷氨酰胺的抗氧化作用 | 第33-34页 |
| ·谷氨酰胺的代谢及对整个机体代谢的影响 | 第34-36页 |
| 4 代谢组 | 第36-46页 |
| ·代谢组学的概念与发展 | 第36-37页 |
| ·代谢组学的优缺点 | 第37-38页 |
| ·代谢组学研究的仪器分析技术 | 第38-41页 |
| ·气质联用和二维气质联用 | 第38-39页 |
| ·液质联用 | 第39-40页 |
| ·基于核磁共振方法 | 第40-41页 |
| ·MS与MR联用技术在代谢组学研究中的应用 | 第41页 |
| ·代谢组学研究的数据处理方法 | 第41-44页 |
| ·非监督方法 | 第42页 |
| ·有监督方法 | 第42-44页 |
| ·代谢组学在营养学研究中的运用 | 第44-46页 |
| ·营养和膳食(日粮)作用的代谢分析 | 第44页 |
| ·肠道微生物和宿主代谢互作 | 第44-46页 |
| 5 本试验的研究目标、研究内容和拟解决的关键问题 | 第46-48页 |
| ·研究目标 | 第46页 |
| ·研究内容 | 第46-47页 |
| ·拟解决的关键问题 | 第47-48页 |
| 第二章 仔猪早期断奶氨基酸代谢谱变化研究 | 第48-67页 |
| 1 材料与方法 | 第49-51页 |
| ·试验动物 | 第49页 |
| ·实验设计 | 第49-50页 |
| ·血清样品的采集和保存 | 第50页 |
| ·葡萄糖、总蛋白和白蛋白含量的测定 | 第50页 |
| ·血浆游离氨基酸浓度测定 | 第50页 |
| ·数据处理和模式识别 | 第50-51页 |
| ·数据处理 | 第50页 |
| ·模式识别 | 第50-51页 |
| 2 结果 | 第51-62页 |
| ·断奶仔猪血清葡萄糖、总蛋白和白蛋白浓度 | 第51-52页 |
| ·断奶仔猪血清氨基酸浓度 | 第52-54页 |
| ·断奶仔猪血清氨基酸代谢谱多元统计分析 | 第54-62页 |
| ·主成分分析 | 第54-58页 |
| ·偏最小二乘法判别分析 | 第58-62页 |
| 3 讨论 | 第62-66页 |
| 4 小结 | 第66-67页 |
| 第三章 基于气相/质谱联用的代谢组学方法研究仔猪对早期断奶和谷胺酰胺添加的影响 | 第67-88页 |
| 1 材料与方法 | 第68-73页 |
| ·试验材料 | 第68页 |
| ·试验动物 | 第68页 |
| ·试验日粮 | 第68页 |
| ·试验程序 | 第68-69页 |
| ·试验设计 | 第69-70页 |
| ·血清样品的采集和保存 | 第70页 |
| ·样本处理 | 第70-71页 |
| ·GC-MS分析 | 第71页 |
| ·传统生化试剂盒检测 | 第71页 |
| ·数据处理与模式识别 | 第71-73页 |
| 2 结果 | 第73-83页 |
| ·生长性能 | 第73页 |
| ·GC/MS分析方法验证 | 第73页 |
| ·样品的代谢组学分析 | 第73-76页 |
| ·断奶相关的代谢产物变化 | 第76-77页 |
| ·谷氨酰胺处理对断奶相关代谢产物变化的影响 | 第77-78页 |
| ·哺乳组、对照组、谷氨酰胺组断奶相关代谢物的比较 | 第78-82页 |
| ·传统试剂盒法测定的血清代谢物浓度 | 第82-83页 |
| 3 讨论 | 第83-87页 |
| 4 小结 | 第87-88页 |
| 第四章 谷氨酰胺对断奶仔猪营养物质消化吸收的影响 | 第88-112页 |
| 1 材料与方法 | 第89-95页 |
| ·试验材料 | 第89-90页 |
| ·试验动物 | 第89页 |
| ·试验饲粮 | 第89-90页 |
| ·试验设计与样品采集 | 第90-91页 |
| ·实验一 | 第90-91页 |
| ·实验二 | 第91页 |
| ·饲养管理 | 第91页 |
| ·饲粮组分表观消化率的测定 | 第91页 |
| ·组织准备和空肠酶活力测定 | 第91-92页 |
| ·总RNA的提取及反转录 | 第92页 |
| ·引物设计 | 第92-93页 |
| ·反应体系及条件 | 第93-94页 |
| ·数据处理 | 第94-95页 |
| 2 结果 | 第95-107页 |
| ·谷氨酰胺对饲粮表观消化率的影响 | 第95-97页 |
| ·谷氨酰胺对断奶仔猪生长性能的影响 | 第97页 |
| ·谷氨酰胺对断奶仔猪回肠末端表观消化率的影响 | 第97-99页 |
| ·荧光定量PCR标准曲线与熔解曲线分析结果 | 第99-103页 |
| ·谷氨酰胺对空肠吸收与健康相关因子的影响 | 第103-105页 |
| ·谷氨酰胺对空肠谷氨酰胺和能量代谢酶活力的影响 | 第105-107页 |
| 3 讨论 | 第107-111页 |
| 4 小结 | 第111-112页 |
| 第五章 L-谷氨酰胺对断奶仔猪的影响：血清代谢谱比较和肝脏代谢调节分析 | 第112-131页 |
| 1 材料与方法 | 第112-116页 |
| ·试验材料 | 第112-113页 |
| ·试验动物 | 第112页 |
| ·试验饲粮 | 第112-113页 |
| ·实验设计与饲养管理 | 第113页 |
| ·采样与保存 | 第113页 |
| ·样本处理 | 第113页 |
| ·GC-MS分析 | 第113-114页 |
| ·常规检测盒法测定血清代谢物 | 第114页 |
| ·组织准备和酶分析 | 第114页 |
| ·肝脏总RNA的提取及反转录 | 第114-115页 |
| ·荧光定量PCR反应引物与体系 | 第115页 |
| ·数据处理与模式识别 | 第115-116页 |
| 2 结果 | 第116-127页 |
| ·生产性能 | 第116页 |
| ·血清代谢组学分析 | 第116-117页 |
| ·谷氨酰胺处理对血清代谢谱的影响 | 第117-122页 |
| ·主成分分析 | 第122-124页 |
| ·利用试剂盒检测血清代谢物 | 第124-125页 |
| ·谷氨酰胺对猪肝脏代谢酶活性的影响 | 第125页 |
| ·谷氨酰胺对肝脏PK,mTOR,PPARγ mRNA水平的影响 | 第125-127页 |
| 3 讨论 | 第127-130页 |
| 4 小结 | 第130-131页 |
| 第六章 谷氨酰胺对氧化应激引起的细胞凋亡影响 | 第131-148页 |
| 1 材料与方法 | 第131-138页 |
| ·试验材料 | 第131-132页 |
| ·试验试剂 | 第131-132页 |
| ·主要仪器设备 | 第132页 |
| ·细胞培养 | 第132页 |
| ·Gln和H_2O_2处理HT-29细胞 | 第132页 |
| ·丙二醛含量和超氧化物歧化酶活性测定 | 第132-133页 |
| ·裂解细胞 | 第132-133页 |
| ·丙二醛含量测定 | 第133页 |
| ·超氧化物歧化酶活性测定 | 第133页 |
| ·总RNA提取方法 | 第133-134页 |
| ·前期准备 | 第133-134页 |
| ·细胞总RNA的提取步骤 | 第134页 |
| ·反转录 | 第134-135页 |
| ·荧光定量PCR | 第135-137页 |
| ·引物设计和合成 | 第135-136页 |
| ·荧光定量PCR扩增体系和反应条件 | 第136-137页 |
| ·流式细胞仪分析 | 第137页 |
| ·数据处理 | 第137-138页 |
| 2 结果 | 第138-145页 |
| ·培养细胞 | 第138页 |
| ·Gln对H_2O_2诱导的氧化状态改变的影响 | 第138-139页 |
| ·Gln对H_2O_2诱导的细胞凋亡相关基因表达的影响 | 第139-142页 |
| ·流式细胞仪分析 | 第142-145页 |
| 3 讨论 | 第145-147页 |
| 4 小结 | 第147-148页 |
| 第七章 本研究主要结论与创新点及下一步研究思路 | 第148-150页 |
| 1 主要结论 | 第148页 |
| 2 创新点 | 第148-149页 |
| 3 下一步的研究思路 | 第149-150页 |
| 参考文献 | 第150-167页 |
| 博士期间研究成果及发表的论文 | 第167页 |
