| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-25页 |
| ·植物激素SA/JA参与植物抗病过程的研究进展 | 第12-14页 |
| ·植物防御信号转导 | 第12-13页 |
| ·SA/JA在植物抗病过程中的作用 | 第13-14页 |
| ·脂肪酸去饱和酶及其衍生物研究进展 | 第14-22页 |
| ·脂肪酸种类及其生物合成 | 第14-16页 |
| ·脂肪酸参与植物对细菌和真菌病害的基础防御 | 第16-17页 |
| ·脂肪酸参与R基因介导的植物抗性 | 第17-19页 |
| ·脂肪酸及其衍生物参与植物系统免疫 | 第19-20页 |
| ·植物防御反应中的重要氧化脂质 | 第20-22页 |
| ·病毒诱导的基因沉默研究进展 | 第22-23页 |
| ·VIGS研究进展 | 第22页 |
| ·VIGS实验的优点 | 第22-23页 |
| ·VIGS在单子叶植物中的应用 | 第23页 |
| ·本研究意义和技术路线 | 第23-25页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第25-36页 |
| ·实验材料 | 第25-26页 |
| ·植物材料 | 第25页 |
| ·主要仪器 | 第25页 |
| ·主要试剂 | 第25-26页 |
| ·试验方法 | 第26-36页 |
| ·材料培养与处理 | 第26-27页 |
| ·离体培养 | 第27页 |
| ·小麦叶片总RNA的提取与检测 | 第27-28页 |
| ·cDNA第一链的合成与检测 | 第28-29页 |
| ·RealtimePCR | 第29-30页 |
| ·VIGS载体的构建 | 第30-33页 |
| ·引物设计 | 第30页 |
| ·PCR反应 | 第30页 |
| ·目标片段的回收与纯化 | 第30-31页 |
| ·pEASY-T1Simple载体连接转化 | 第31页 |
| ·菌液PCR检测 | 第31页 |
| ·酶切检测 | 第31-32页 |
| ·BSMV-γ载体连接转化 | 第32-33页 |
| ·体外转录 | 第33-34页 |
| ·病毒接种及离体鉴定 | 第34页 |
| ·显微观察及次生菌丝的统计 | 第34-35页 |
| ·显微观察 | 第34-35页 |
| ·次生菌丝的统计 | 第35页 |
| ·TaFAD基因cDNA全长的分离与分析 | 第35-36页 |
| 第三章 结果与分析 | 第36-53页 |
| ·外源SA/JA对小麦白粉病抗性的诱导作用 | 第36-37页 |
| ·SA/JA路径基因在接菌条件下的表达检测 | 第37-44页 |
| ·20个基因的信息及其RealtimePCR引物序列 | 第37-40页 |
| ·RealtimePCR结果 | 第40-44页 |
| ·抗病基因的筛选 | 第44-46页 |
| ·设计的10对VIGS引物 | 第44-45页 |
| ·VIGS实验筛选结果 | 第45-46页 |
| ·小麦TaFAD2基因的克隆与SA/JA处理下的表达检测 | 第46-49页 |
| ·TaFAD基因cDNA全长的分离与分析 | 第46-48页 |
| ·SA/JA处理下TaFAD2基因的表达检测 | 第48-49页 |
| ·TaFAD2抗病性鉴定 | 第49-53页 |
| ·TaFAD2的VIGS植株中TaFAD2的表达检测 | 第49页 |
| ·BSMV:TaFAD2的表型观察 | 第49-50页 |
| ·BSMV:TaFAD2的显微观察 | 第50-51页 |
| ·TaFAD2的VIGS植株中基因表达检测 | 第51-53页 |
| 第四章 讨论 | 第53-55页 |
| ·TaFAD2参与抗白粉病或许是通过降低小麦内源18:1脂肪酸水平来实现的 | 第53页 |
| ·TaFAD2位于SA和JA路径的上游 | 第53页 |
| ·TaFAD2参与小麦抗病可能的工作机制 | 第53-55页 |
| 第五章 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 个人简历、在学习期间的研究成果及发表的学术论文 | 第63页 |
