| 摘要 | 第1-12页 |
| Abstract | 第12-16页 |
| 第1章 绪言 | 第16-32页 |
| 1．1 茄子组织培养研究进展 | 第16-19页 |
| 1．1．1 茎段培养 | 第17页 |
| 1．1．2 花药(粉)培养 | 第17页 |
| 1．1．3 胚培养 | 第17-18页 |
| 1．1．4 原生质体培养 | 第18页 |
| 1．1．5 茄子组织培养的影响因素 | 第18-19页 |
| 1．2 植物雄性不育的生物化学研究进展 | 第19-23页 |
| 1．2．1 游离氨基酸 | 第19-20页 |
| 1．2．2 激素 | 第20页 |
| 1．2．3 过氧化物酶同工酶 | 第20-21页 |
| 1．3．4 酯酶同工酶 | 第21-22页 |
| 1．2．5 蛋白质分析 | 第22-23页 |
| 1．3 植物细胞质雄性不育分子生物学研究进展 | 第23-30页 |
| 1．3．1 CMS形成的分子机制 | 第25-27页 |
| 1．3．1．1 线粒体DNA重排引起CMS | 第25页 |
| 1．3．1．2 转录和翻译调控导致CMS | 第25-26页 |
| 1．3．1．3 核质互作的结果导致CMS的发生 | 第26-27页 |
| 1．3．1．4 特异多肽引起CMS | 第27页 |
| 1．3．2 CMS与mtDNA | 第27-30页 |
| 1．3．2．1 线粒体DNA的RAPD分析 | 第27-28页 |
| 1．3．2．2 线粒体DNA的RAPD特异扩增片段的克隆和序列分析 | 第28-29页 |
| 1．3．2．3 线粒体DNA的限制性内切酶分析 | 第29-30页 |
| 1．4 本研究的目的和意义 | 第30-32页 |
| 第2章 茄子雄性不育材料组织培养研究 | 第32-37页 |
| 2．1 引言 | 第32页 |
| 2．2 实验部分 | 第32-33页 |
| 2．2．1 材料 | 第32-33页 |
| 2．2．2 方法 | 第33页 |
| 2．2．2．1 愈伤组织的诱导 | 第33页 |
| 2．2．2．2 愈伤组织的分化 | 第33页 |
| 2．2．2．3 芽的生长 | 第33页 |
| 2．3 结果分析 | 第33-35页 |
| 2．3．1 不同激素对愈伤组织诱导的影响 | 第33-34页 |
| 2．3．2 不同激素对愈伤组织的分化的影响 | 第34页 |
| 2．3．3 不同激素对芽生长的影响 | 第34-35页 |
| 2．4 讨论 | 第35-36页 |
| 2．5 小结 | 第36-37页 |
| 第3章 茄子雄性不育材料与可育材料的RAPD分析 | 第37-57页 |
| 3．1 茄子雄性不育材料与可育材料总DNA的RAPD分析 | 第37-45页 |
| 3．1．1 引言 | 第37页 |
| 3．1．2 实验部分 | 第37-39页 |
| 3．1．2．1 材料 | 第37页 |
| 3．1．2．2 总 DNA提取 | 第37-38页 |
| 3．1．2．3 总 DNA的检测 | 第38页 |
| 3．1．2．4 引物 | 第38页 |
| 3．1．2．5 RAPD反应 | 第38-39页 |
| 3．1．2．6 扩增产物的检测 | 第39页 |
| 3．1．3 结果分析 | 第39-45页 |
| 3．1．3．1 总 DNA的提取 | 第39页 |
| 3．1．3．2 总 DNA的检测 | 第39-40页 |
| 3．1．3．3 引物筛选 | 第40-43页 |
| 3．1．3．4 多态性分析 | 第43-44页 |
| 3．1．3．5 质的差异和量的差异 | 第44-45页 |
| 3．1．4 讨论 | 第45页 |
| 3．2 茄子雄性不育材料与可育材料核DNA的RAPD分析 | 第45-50页 |
| 3．2．1 引言 | 第45-46页 |
| 3．2．2 实验部分 | 第46-48页 |
| 3．2．2．1 材料 | 第46页 |
| 3．2．2．2 核 DNA提取 | 第46-47页 |
| 3．2．2．3 核 DNA的检测 | 第47页 |
| 3．2．2．4 引物 | 第47页 |
| 3．2．2．5 RAPD反应 | 第47页 |
| 3．2．2．6 扩增产物的检测 | 第47-48页 |
| 3．2．3 结果分析 | 第48-50页 |
| 3．2．3．1 核 DNA的提取 | 第48页 |
| 3．2．3．2 核 DNA的检测 | 第48-49页 |
| 3．2．3．3 所用引物及扩增结果 | 第49页 |
| 3．2．3．4 质的差异和量的差异 | 第49-50页 |
| 3．2．4 讨论 | 第50页 |
| 3．3 茄子雄性不育材料与可育材料线粒体DNA的RAPD分析 | 第50-56页 |
| 3．3．1 引言 | 第50-51页 |
| 3．3．2 实验部分 | 第51-53页 |
| 3．3．2．1 材料 | 第51页 |
| 3．3．2．2 线粒体 DNA的提取 | 第51-52页 |
| 3．3．2．3 线粒体 DNA的检测 | 第52页 |
| 3．3．2．4 引物 | 第52页 |
| 3．3．2．5 RAPD反应 | 第52页 |
| 3．3．2．6 扩增产物的检测 | 第52-53页 |
| 3．3．3 结果分析 | 第53-55页 |
| 3．3．3．1 线粒体DNA的提取 | 第53页 |
| 3．3．3．2 线粒体DNA的检测 | 第53-54页 |
| 3．3．3．3 所用引物及扩增结果 | 第54-55页 |
| 3．3．3．4 质的差异和量的差异 | 第55页 |
| 3．3．4 讨论 | 第55-56页 |
| 3．4 小结 | 第56-57页 |
| 第4章 茄子雄性不育材料与可育材料的蛋白质分析 | 第57-69页 |
| 4．1 引言 | 第57-58页 |
| 4．2 实验部分 | 第58-63页 |
| 4．2．1 材料 | 第58页 |
| 4．2．2 蛋白质提取 | 第58-59页 |
| 4．2．3 蛋白质含量测定 | 第59页 |
| 4．2．4 蛋白质聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第59-61页 |
| 4．2．4．1 样品处理 | 第59页 |
| 4．2．4．2 SDS-PAGE垂直板电泳 | 第59-61页 |
| 3．2．4．3 染色 | 第61页 |
| 4．2．5 蛋白质双向电泳 | 第61-63页 |
| 4．2．5．1 样品处理 | 第61页 |
| 4．2．5．2 第一向固相pH梯度等电聚焦 | 第61-62页 |
| 4．2．5．3 第二向SDS-PAGE垂直板电泳 | 第62-63页 |
| 4．2．5．4 染色 | 第63页 |
| 4．3 结果分析 | 第63-68页 |
| 4．3．1 样品提取 | 第63-64页 |
| 4．3．2 蛋白质含量测定 | 第64-65页 |
| 4．3．3 SDS-PAGE垂直板电泳 | 第65-66页 |
| 4．3．3．1 不同分离胶浓度的分离效果 | 第65页 |
| 4．3．3．2 雄性不育和可育材料SDS-PAGE图谱的差异 | 第65-66页 |
| 4．3．4 蛋白质双向电泳 | 第66-68页 |
| 4．4 小结 | 第68-69页 |
| 结论 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 缩略词注释表 | 第76-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 附录 | 第79页 |
