| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-8页 |
| 1 前言 | 第8-21页 |
| 1．1 海藻糖的结构 | 第8页 |
| 1．2 海藻糖的分布 | 第8-9页 |
| 1．3 海藻糖的物理化学性质 | 第9-10页 |
| 1．3．1 稳定性及呈色性 | 第9页 |
| 1．3．2 溶解性、甜度及渗透压 | 第9页 |
| 1．3．3 吸湿性 | 第9-10页 |
| 1．3．4 其它性质 | 第10页 |
| 1．4 海藻糖的生物学特性 | 第10-11页 |
| 1．5 海藻糖的检测 | 第11-12页 |
| 1．5．1 薄层色谱法 | 第11页 |
| 1．5．2 气相色谱法 | 第11-12页 |
| 1．5．3 高效液相色谱法 | 第12页 |
| 1．5．4 酶法 | 第12页 |
| 1．6 海藻糖的合成 | 第12-17页 |
| 1．6．1 利用微生物自然合成海藻糖 | 第12页 |
| 1．6．2 采用基因重组的方法 | 第12-13页 |
| 1．6．3 酶法合成海藻糖 | 第13-17页 |
| 1．7 海藻糖的应用 | 第17-19页 |
| 1．7．1 食品方面 | 第17-18页 |
| 1．7．2 医药方面 | 第18页 |
| 1．7．3 化妆品方面 | 第18页 |
| 1．7．4 农业领域 | 第18-19页 |
| 1．8 渗透细胞技术及其在酶工程中的应用 | 第19-20页 |
| 1．8．1 渗透细胞技术简介 | 第19页 |
| 1．8．2 渗透细胞技术的应用 | 第19-20页 |
| 1．9 本课题研究内容 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-25页 |
| 2．1 材料与设备 | 第21页 |
| 2．1．1 主要材料 | 第21页 |
| 2．1．2 主要仪器设备 | 第21页 |
| 2．2 方法 | 第21-25页 |
| 2．2．1 酶活力的测定 | 第21页 |
| 2．2．2 高效液相色谱法（HPLC）测定海藻糖 | 第21-22页 |
| 2．2．3 产海藻糖合酶菌株的筛选 | 第22页 |
| 2．2．4 培养特性的研究 | 第22-23页 |
| 2．2．5 透性化细胞海藻糖合酶的研制 | 第23页 |
| 2．2．6 冻干透性化细胞海藻糖合酶特性的研究 | 第23-24页 |
| 2．2．7 海藻糖制取工艺的优化 | 第24-25页 |
| 3 结果与讨论 | 第25-43页 |
| 3．1 产海藻糖合酶菌株的筛选 | 第25页 |
| 3．2 假恶臭单胞杆菌H76的培养特性 | 第25-31页 |
| 3．2．1 最佳诱导培养基的设计 | 第25-29页 |
| 3．2．2 发酵工艺的优化 | 第29-31页 |
| 3．3 渗透恶臭假单胞杆菌细胞的方法与工艺的研究 | 第31-35页 |
| 3．3．1 最佳渗透试剂的选择 | 第31-32页 |
| 3．3．2 最佳渗透条件的选择 | 第32-33页 |
| 3．3．3 渗透恶臭假单胞杆菌细胞最佳浓度的确定 | 第33页 |
| 3．3．4 冷冻干燥对透性化细胞海藻糖合酶活力的影响 | 第33-35页 |
| 3．4 透性化细胞海藻糖合酶特性的研究 | 第35-39页 |
| 3．4．1 酶反应最适温度及耐热性的测定 | 第35-36页 |
| 3．4．2 酶反应的最适pH值及pH稳定性的测定 | 第36-37页 |
| 3．4．3 金属离子对透性化细胞海藻糖合酶活力的影响 | 第37-38页 |
| 3．4．4 酶的底物特异性的研究 | 第38页 |
| 3．4．5 透性化细胞海藻糖合酶保存稳定性的研究 | 第38-39页 |
| 3．5 透性化细胞海藻糖合酶制取海藻糖反应工艺的优化 | 第39-43页 |
| 3．5．1 底物浓度对产率的影响 | 第39页 |
| 3．5．2 反应时间及温度对海藻糖产率的影响 | 第39-40页 |
| 3．5．3 海藻糖制取工艺的优化 | 第40-43页 |
| 4 结论 | 第43-44页 |
| 4．1 产海藻糖合酶菌株的筛选 | 第43页 |
| 4．2 恶臭假单胞杆菌H76的培养特性 | 第43页 |
| 4．3 透性化恶臭假单胞杆菌细胞海藻糖合酶的研制 | 第43页 |
| 4．4 透性化恶臭假单胞杆菌细胞海藻糖合酶的特性 | 第43页 |
| 4．5 透性化细胞海藻糖合酶制取海藻糖工艺的优化 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 附图 | 第50-51页 |
