小叶满江红共生蓝细菌的细胞程序性死亡研究
摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
图表清单 | 第12-13页 |
缩略词表 | 第13-14页 |
第一章 文献综述 | 第14-32页 |
1 细胞程序性死亡概念 | 第14-16页 |
·细胞程序性死亡概念的提出 | 第14页 |
·细胞程序性死亡研究的发展阶段 | 第14-16页 |
2 细胞程序性死亡途径 | 第16-21页 |
·细胞凋亡途径 | 第16-17页 |
·细胞坏死途径 | 第17-18页 |
·自体吞噬途径 | 第18-20页 |
·细胞自溶途径 | 第20-21页 |
3 真核生物细胞程序性死亡 | 第21-22页 |
·动物细胞程序性死亡 | 第21页 |
·植物细胞程序性死亡 | 第21-22页 |
4 原核生物细胞程序性死亡 | 第22-24页 |
·细菌的细胞程序性死亡 | 第23页 |
·自生蓝细菌的细胞程序性死亡 | 第23-24页 |
5 细胞程序性死亡研究意义 | 第24页 |
6 细胞程序性死亡检测方法的研究进展 | 第24-29页 |
·PCD 细胞形态学检测 | 第24-27页 |
·PCD 细胞生化分子水平检测 | 第27-29页 |
·检测方法研究展望 | 第29页 |
7 满江红和蓝细菌的共生关系 | 第29-31页 |
·关于满江红 | 第29页 |
·蓝细菌 | 第29-30页 |
·满江红与蓝细菌的共生关系 | 第30-31页 |
8 本研究的目的和意义 | 第31-32页 |
第二章 共生蓝细菌细胞程序性死亡的形态学检测 | 第32-37页 |
1 材料 | 第32页 |
·供试材料 | 第32页 |
·药品与试剂 | 第32页 |
·仪器 | 第32页 |
2 方法 | 第32-33页 |
·实验设计 | 第32页 |
·小叶满江红的培养 | 第32页 |
·荧光显微镜检测 | 第32-33页 |
·共生蓝藻的分离和预处理 | 第32-33页 |
·Hoechst33342 试剂盒荧光染色 | 第33页 |
·透射电镜检测 | 第33页 |
3 结果 | 第33-36页 |
·IRRI 培养液培养小叶满江红 | 第33-34页 |
·荧光显微镜的检测 | 第34-35页 |
·透射电镜的检测 | 第35-36页 |
4 讨论 | 第36-37页 |
第三章 共生蓝细菌PCD 的生化分子水平检测 | 第37-57页 |
1 TUNEL 检测法 | 第37-42页 |
·材料 | 第37页 |
·供试材料 | 第37页 |
·药品与试剂 | 第37页 |
·仪器 | 第37页 |
·方法 | 第37-38页 |
·共生蓝藻的分离和预处理 | 第37页 |
·TUNEL 试剂盒检测 | 第37-38页 |
·TUNEL 检测的条件优化 | 第38页 |
·结果 | 第38-41页 |
·多聚甲醛的固定 | 第38-39页 |
·溶菌酶的作用 | 第39-40页 |
·蛋白酶K 的作用 | 第40页 |
·阳性和阴性对照 | 第40-41页 |
·讨论 | 第41-42页 |
·TUNEL 检测细胞凋亡的优点和局限性 | 第41页 |
·小叶满江红中共生蓝藻的分离 | 第41页 |
·蓝藻细胞TUNEL 检测处理条件的探讨 | 第41-42页 |
2 相关基因克隆鉴定 | 第42-57页 |
·材料 | 第42-43页 |
·供试材料 | 第42页 |
·药品与试剂 | 第42-43页 |
·仪器 | 第43页 |
·方法 | 第43-49页 |
·小叶满江红中共生蓝藻的分离 | 第43页 |
·共生蓝藻总DNA 提取 | 第43-44页 |
·相关基因引物筛选 | 第44-47页 |
·PCR 条件优化 | 第47-48页 |
·目的片段回收 | 第48页 |
·大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备 | 第48页 |
·连接反应 | 第48页 |
·转化 | 第48-49页 |
·克隆筛选和鉴定 | 第49页 |
·结果 | 第49-53页 |
·小叶满江红中共生蓝藻的分离 | 第49页 |
·蓝藻总DNA 提取的条件优化 | 第49-50页 |
·相关基因的PCR 条件优化 | 第50-53页 |
·DNA 片段序列分析 | 第53页 |
·讨论 | 第53-57页 |
·PCR 模板的准备 | 第53-54页 |
·PCR 引物的筛选 | 第54页 |
·PCR 反应条件的优化 | 第54-55页 |
·蓝藻PCD 相关基因的探讨 | 第55-57页 |
结语 | 第57-58页 |
后续工作 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
附录 | 第66-72页 |