缩写符号说明 | 第1-5页 |
摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-15页 |
第一章 绪论 | 第15-34页 |
·桦褐孔菌概况 | 第15-19页 |
·桦褐孔菌的分布、形态特征 | 第15-16页 |
·桦褐孔菌的生物学特性 | 第16页 |
·桦褐孔菌的化学成分 | 第16-17页 |
·桦褐孔菌的药用价值 | 第17-18页 |
·桦褐孔菌民间利用的历史和现状 | 第18-19页 |
·桦褐孔菌多糖的研究现状 | 第19-21页 |
·桦褐孔菌多糖的提取方法 | 第19-20页 |
·药理作用 | 第20-21页 |
·多糖抗肿瘤机制研究进展 | 第21-24页 |
·免疫调节作用 | 第21-22页 |
·对肿瘤细胞的直接抑制作用 | 第22页 |
·抑制肿瘤细胞蛋白质和核酸的合成 | 第22页 |
·诱导肿瘤细胞凋亡 | 第22-23页 |
·影响癌基因的表达 | 第23页 |
·改变肿瘤细胞膜的生长特性 | 第23页 |
·对肿瘤细胞端粒酶的影响 | 第23-24页 |
·抗氧化、清除自由基的作用 | 第24页 |
·立题背景与意义 | 第24-25页 |
·本论文研究的主要内容 | 第25页 |
参考文献 | 第25-34页 |
第二章 桦褐孔菌多糖提取工艺研究 | 第34-53页 |
·引言 | 第34-35页 |
·材料与仪器 | 第35页 |
·材料 | 第35页 |
·主要试剂 | 第35页 |
·主要仪器 | 第35页 |
·试验方法 | 第35-40页 |
·桦褐孔菌的化学组成分析 | 第35页 |
·原料预处理 | 第35页 |
·IOP提取工艺流程 | 第35-36页 |
·水浸提IOP条件的正交试验设计 | 第36页 |
·超声-微波辅助提取IOP | 第36-37页 |
·超声-微波辅助提取优化试验 | 第37-38页 |
·IOP的得率、纯度计算 | 第38页 |
·多糖的保留率计算 | 第38页 |
·蛋白质的脱除率计算 | 第38页 |
·脱色率计算 | 第38页 |
·传统水浸提与超声-微波辅助提取的比较 | 第38页 |
·多糖粗提物的初步纯化 | 第38-40页 |
·IOP的紫外-可见光谱分析 | 第40页 |
·数据统计分析 | 第40页 |
·结果与讨论 | 第40-50页 |
·桦褐孔菌的化学组成分析 | 第40页 |
·水浸提条件的正交试验优化结果 | 第40-41页 |
·水浸提验证试验 | 第41页 |
·响应曲面试验设计与试验结果 | 第41-42页 |
·拟合模型的建立 | 第42-43页 |
·回归模型检验 | 第43-45页 |
·回归方程的优化 | 第45-46页 |
·最佳工艺条件的确定 | 第46-47页 |
·超声-微波辅助提取与水浸提法的比较 | 第47-48页 |
·脱蛋白方法的比较 | 第48页 |
·脱色材料的选择 | 第48-49页 |
·聚酰胺色谱柱对IOP中蛋白质的脱除效果(紫外-可见光谱分析) | 第49-50页 |
·本章小结 | 第50页 |
参考文献 | 第50-53页 |
第三章 桦褐孔菌粗多糖的理化性质及其抗肿瘤活性评价 | 第53-66页 |
·引言 | 第53页 |
·材料与仪器 | 第53-54页 |
·试验材料 | 第53页 |
·主要试剂 | 第53页 |
·主要试验仪器 | 第53-54页 |
·试验方法 | 第54-56页 |
·多糖理化性质 | 第54页 |
·多糖化学组分分析 | 第54页 |
·单糖组成分析 | 第54-55页 |
·IOP的相对分子质量分布测定 | 第55页 |
·IOP溶液黏度性质 | 第55页 |
·IOP的抗肿瘤活性评价 | 第55-56页 |
·数据统计分析 | 第56页 |
·结果与讨论 | 第56-63页 |
·IOP的理化性质 | 第56-57页 |
·IOP化学组分分析 | 第57页 |
·IOP单糖组成 | 第57-59页 |
·IOP相对分子质量分布 | 第59页 |
·IOP溶液黏度性质 | 第59-62页 |
·IOP的抗肿瘤作用评价 | 第62-63页 |
·本章小结 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-66页 |
第四章 桦褐孔菌多糖分离纯化及其抗肿瘤活性组分筛选 | 第66-78页 |
·引言 | 第66页 |
·材料与仪器 | 第66页 |
·试验材料 | 第66页 |
·主要试剂 | 第66页 |
·主要仪器 | 第66页 |
·试验方法 | 第66-68页 |
·DEAE-SepharoseCL-6B离子交换柱分级纯化 | 第66-67页 |
·SepharoseCL-6B凝胶柱分级纯化 | 第67页 |
·Sephadex G-200凝胶柱分级纯化 | 第67页 |
·纯度鉴定和相对分子质量分布 | 第67页 |
·单糖组成分析 | 第67页 |
·紫外光谱(UV)分析 | 第67页 |
·IOP级分抗肿瘤活性筛选 | 第67页 |
·数据分析 | 第67-68页 |
·结果与讨论 | 第68-76页 |
·IOP的DEAE-SepharoseCL-6B离子交换分级纯化 | 第68页 |
·IOP经DEAE-SepharoseCL-6B柱层析各组分对肿瘤细胞的抑制作用 | 第68-69页 |
·IOP3的凝胶柱分级纯化及活性成份筛选 | 第69-71页 |
·IOP3a紫外扫描图谱 | 第71页 |
·IOP3a第二次凝胶柱色谱分离 | 第71-72页 |
·IOP3a纯度鉴定及相对分子质量分布 | 第72-73页 |
·IOP1的凝胶柱分级纯化及活性成份筛选 | 第73-75页 |
·IOP1b纯度鉴定及相对分子质量分布 | 第75页 |
·IOP1b的单糖组成 | 第75-76页 |
·本章小结 | 第76页 |
参考文献 | 第76-78页 |
第五章 桦褐孔菌多糖IOP3a抗肿瘤活性及其机制研究 | 第78-96页 |
·引言 | 第78-79页 |
·材料与仪器 | 第79页 |
·试验材料 | 第79页 |
·主要试剂 | 第79页 |
·主要仪器 | 第79页 |
·实验方法 | 第79-82页 |
·IOP3a体内抗肿瘤活性及其机制 | 第79-81页 |
·IOP3诱导肿瘤细胞凋亡及其机制 | 第81-82页 |
·数据处理 | 第82页 |
·结果与讨论 | 第82-93页 |
·荷瘤裸鼠移植瘤生长曲线 | 第82-83页 |
·IOP3a对裸鼠Jurkat肉瘤的抑制作用 | 第83页 |
·IOP3a对荷瘤裸鼠免疫器官指数的影响 | 第83-84页 |
·IOP3a对荷瘤裸鼠外周血WBC和淋巴细胞的影响 | 第84页 |
·组织病理学观察 | 第84-85页 |
·IOP3a对裸鼠Jurkat肿瘤组织中Bax和Bcl-2基因蛋白表达的影响 | 第85-86页 |
·光学显微镜下凋亡细胞形态学观察 | 第86-87页 |
·荧光显微镜下凋亡细胞形态学 | 第87页 |
·扫描电镜观察IOP3a对不同细胞的形态影响 | 第87-88页 |
·流式细胞仪FITC-Annexin Ⅴ/PI双染色法检测细胞凋亡率 | 第88-90页 |
·蛋白质印迹法检测Cytc的释放 | 第90页 |
·蛋白质印迹法检测caspase-3蛋白的表达的变化 | 第90-92页 |
·DNA ladder | 第92-93页 |
·本章小结 | 第93-94页 |
参考文献 | 第94-96页 |
第六章 桦褐孔菌多糖IOP3a结构鉴定 | 第96-111页 |
·引言 | 第96页 |
·材料与方法 | 第96页 |
·材料 | 第96页 |
·主要试剂 | 第96页 |
·主要设备 | 第96页 |
·试验方法 | 第96-98页 |
·IOP3a的理化性质 | 第96-97页 |
·化学组成分析 | 第97页 |
·甲基化分析 | 第97-98页 |
·NMR分析 | 第98页 |
·IOP3a高级结构 | 第98页 |
·热重分析 | 第98页 |
·结果与讨论 | 第98-109页 |
·IOP3a的理化性质 | 第98-99页 |
·IOP3a的化学组成 | 第99页 |
·IOP3a的中性单糖组成分析 | 第99-100页 |
·IOP3a的甲基化分析 | 第100-101页 |
·~1HNMR和~(13)CNMR分析 | 第101-103页 |
·COSY45、TOCSY和HMBC 2DNMR分析 | 第103-104页 |
·IOP3a红外光谱测定 | 第104-105页 |
·IOP3a的一级结构表征 | 第105-106页 |
·IOP3a高级结构 | 第106-108页 |
·IOP3a的热重分析 | 第108-109页 |
·本章小结 | 第109页 |
参考文献 | 第109-111页 |
主要结论 | 第111-113页 |
展望 | 第113-114页 |
论文主要创新点 | 第114-115页 |
致谢 | 第115-116页 |
附录:作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第116-117页 |
附录:IOP3a甲基化质谱图 | 第117-119页 |