| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第13-24页 |
| 1.1 异三聚体G蛋白的组成和信号转导机制 | 第13-15页 |
| 1.1.1 异三聚体G蛋白的组成 | 第13页 |
| 1.1.2 G蛋白的生物学定位 | 第13-14页 |
| 1.1.3 异三聚体G蛋白的转导机制 | 第14-15页 |
| 1.2 异三聚体G蛋白在植物细胞信号转导的作用 | 第15-18页 |
| 1.2.1 G蛋白α亚基在植物生长发育中的作用 | 第15-16页 |
| 1.2.2 G蛋白α亚基在激素信号转导中的作用 | 第16-17页 |
| 1.2.3 G蛋白α亚基在植物非生物胁迫中的响应 | 第17-18页 |
| 1.3 植物对低温胁迫的信号应答机制 | 第18-23页 |
| 1.3.1 植物对低温的响应 | 第20-21页 |
| 1.3.2 植物Ca~(2+)依赖型信号转导 | 第21-22页 |
| 1.3.3 依赖于CBF基因通路的低温通路相关基因的研究进展 | 第22-23页 |
| 1.4 本研究的目的意义 | 第23-24页 |
| 第二章 材料与方法 | 第24-48页 |
| 2.1 实验材料和处理方法 | 第24-25页 |
| 2.1.1 转基因株系的获得和鉴定 | 第24页 |
| 2.1.2 黄瓜G蛋白α亚基基因( CsGPA1)的时空表达分析 | 第24页 |
| 2.1.3 野生型和转基因种子获得 | 第24页 |
| 2.1.4 黄瓜G蛋白α亚基基因(CsGPA1)对黑暗条件下黄瓜幼苗生长发育的影响 | 第24-25页 |
| 2.1.5 低温处理 | 第25页 |
| 2.1.6 数据统计与分析 | 第25页 |
| 2.2 研究方案设计 | 第25-26页 |
| 2.3 菌株和载体 | 第26页 |
| 2.4 酶及药品试剂与仪器设备 | 第26页 |
| 2.5 实验方法 | 第26-48页 |
| 2.5.1 基因克隆与进化树分析 | 第26-31页 |
| 2.5.2 黄瓜G蛋白α亚基基因(CsGPA1)的转基因试验 | 第31-39页 |
| 2.5.3 转基因植株的获得(DNA和RNA鉴定)以及生理指标测定 | 第39-41页 |
| 2.5.4 种子萌发率的分析 | 第41页 |
| 2.5.5 黄瓜幼苗形态测定分析 | 第41页 |
| 2.5.6 HPLC内源激素含量测定 | 第41-42页 |
| 2.5.7 相对电导率(REC)测定 | 第42-43页 |
| 2.5.8 膜脂过氧化(MDA)测定 | 第43页 |
| 2.5.9 脯氨酸(Pro)和可溶性蛋白(Solution protein)含量的测定 | 第43页 |
| 2.5.10 抗氧化酶(SOD、POD和CAT)活性的测定 | 第43-44页 |
| 2.5.11 膜蛋白提取和Western Blot (WB) | 第44页 |
| 2.5.12 分裂泛素酵母双杂 | 第44-46页 |
| 2.5.13 GST融合蛋白沉淀技术(GST pull down) | 第46-48页 |
| 第三章 结果与分析 | 第48-79页 |
| 3.1 黄瓜CsGPA1基因的克隆及序列分析 | 第48-50页 |
| 3.2 黄瓜G蛋白α亚基基因(CsGPA1)的时空表达分析 | 第50页 |
| 3.3 CsGPA1亚细胞与组织定位 | 第50-55页 |
| 3.4 CsGPA1转基因植株的获得 | 第55-57页 |
| 3.5 内源CsGPA1促进黄瓜种子萌发和黑暗条件下早期幼苗的生长 | 第57-68页 |
| 3.6 G蛋白α亚基基因(CsGPA1)参与黄瓜幼苗低温胁迫的响应 | 第68-79页 |
| 第四章 讨论与结论 | 第79-83页 |
| 4.1 黄瓜G蛋白α亚基(CsGPA1)定位于质膜、茎内外韧皮部和根尖分生组织 | 第79页 |
| 4.2 黄瓜G蛋白α亚基基因(CsGPA1)调节黄瓜幼苗下胚轴和根生长并影响内源激素水杨酸的含量 | 第79-81页 |
| 4.3 黄瓜G蛋白α亚基(CsGPA1)参与低温胁迫响应 | 第81-82页 |
| 4.4 结论 | 第82-83页 |
| 第五章 创新点与展望 | 第83-84页 |
| 5.1 创新点 | 第83页 |
| 5.2 展望 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
| 作者简历 | 第93页 |
