| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 缩略词表 | 第5-9页 |
| 第1章 引言 | 第9-15页 |
| 1.1 肠道与健康 | 第9-11页 |
| 1.1.1 肠道概述 | 第9页 |
| 1.1.2 第二脑——肠神经系统 | 第9-10页 |
| 1.1.3 肠上皮形成天然性的保护屏障 | 第10页 |
| 1.1.4 肠功能紊乱与疾病的发生 | 第10-11页 |
| 1.2 自闭症高风险基因CHD8及其研究现状 | 第11-12页 |
| 1.2.1 CHD8简介 | 第11页 |
| 1.2.2 CHD8的时空表达 | 第11-12页 |
| 1.2.3 CHD8与自闭症 | 第12页 |
| 1.2.4 CHD8的生物学功能 | 第12页 |
| 1.3 自闭症与肠功能紊乱 | 第12-15页 |
| 1.3.1 自闭症患者肠道问题 | 第12-13页 |
| 1.3.2 肠脑交流——肠-脑轴 | 第13页 |
| 1.3.3 肠功能改善与自闭症的治疗 | 第13-15页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第15-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第15-17页 |
| 2.1.1 实验模式动物 | 第15页 |
| 2.1.2 实验器材 | 第15-16页 |
| 2.1.3 实验药品 | 第16-17页 |
| 2.1.4 分子实验试剂 | 第17页 |
| 2.2 实验器材、药品与试剂 | 第17-31页 |
| 2.2.1 MO注射及效果验证 | 第17-20页 |
| 2.2.1.1 MO作用原理 | 第17-18页 |
| 2.2.1.2 MO显微注射 | 第18页 |
| 2.2.1.3 MO作用效果验证与分析 | 第18-20页 |
| 2.2.2 斑马鱼肠蠕动视频拍摄 | 第20页 |
| 2.2.3 阿利新蓝杯状细胞染色 | 第20页 |
| 2.2.4 斑马鱼总RNA的提取 | 第20-21页 |
| 2.2.5 斑马鱼总c DNA的制备 | 第21-22页 |
| 2.2.6 TA克隆与转化 | 第22页 |
| 2.2.7 扩大培养与阳性克隆的选择 | 第22-23页 |
| 2.2.8 质粒大量制备 | 第23页 |
| 2.2.9 RNA探针的制备 | 第23-25页 |
| 2.2.10 原位杂交实验 | 第25-28页 |
| 2.2.10.1 原位杂交实验主要试剂的配置 | 第25页 |
| 2.2.10.2 原位杂交实验步骤 | 第25-28页 |
| 2.2.11 免疫组织化学实验 | 第28-31页 |
| 2.2.11.1 免疫组织化学实验原理 | 第28页 |
| 2.2.11.2 免疫组织化学实验过程 | 第28-31页 |
| 第3章 实验结果与分析 | 第31-42页 |
| 3.1 chd8在斑马鱼体内的时空表达 | 第31-32页 |
| 3.2 chd8与肠道蠕动功能 | 第32-33页 |
| 3.3 chd8在肠神经系统发育中的作用 | 第33-36页 |
| 3.3.1 chd8对肠神经元的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.2 chd8对肠神经前体的影响 | 第34-36页 |
| 3.4 chd8在肠内分泌细胞发育中的作用 | 第36-39页 |
| 3.4.1 chd8对肠嗜铬细胞的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.2 chd8对gcga标记的肠内分泌细胞的影响 | 第38-39页 |
| 3.4.3 chd8对nkx2.2a标记的肠内分泌细胞的影响 | 第39页 |
| 3.5 chd8在肠杯状细胞发育中的作用 | 第39-42页 |
| 第4章 结论 | 第42-43页 |
| 第5章 讨论与展望 | 第43-46页 |
| 5.1 chd8在肠道发育中的作用 | 第43页 |
| 5.2 chd8突变导致肠蠕动异常的可能机制 | 第43-44页 |
| 5.3 chd8在肠道发育中的作用与ASD的潜在联系 | 第44-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第54页 |
