| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第1章 绪论 | 第14-25页 |
| 1.1 冠心病的治疗与血管支架 | 第14-16页 |
| 1.1.1 冠心病及冠心病的治疗 | 第14-15页 |
| 1.1.2 血管支架介入治疗 | 第15页 |
| 1.1.3 血管支架的发展及存在的不足 | 第15-16页 |
| 1.2 表面抗凝改性 | 第16-18页 |
| 1.2.1 材料表面改性方法 | 第16-18页 |
| 1.2.2 表面抗凝改性研究现状 | 第18页 |
| 1.3 表面促(诱导)内皮改性 | 第18-21页 |
| 1.3.1 材料表面促内皮改性 | 第18-19页 |
| 1.3.2 表面诱导内皮化 | 第19-21页 |
| 1.4 表面多功能改性 | 第21-22页 |
| 1.4.1 表面多功能改性意义 | 第21页 |
| 1.4.2 表面多功能改性研究现状 | 第21-22页 |
| 1.5 论文研究目的与意义、内容及技术路线 | 第22-25页 |
| 1.5.1 研究目的与意义 | 第22-23页 |
| 1.5.2 论文内容 | 第23页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第23-25页 |
| 第2章 实验方法及原理 | 第25-33页 |
| 2.1 功能层的构建方法及原理 | 第25-26页 |
| 2.1.1 构建原理 | 第25页 |
| 2.1.2 构建方法 | 第25-26页 |
| 2.2 功能层的表征方法及原理 | 第26-30页 |
| 2.2.1 傅里叶变换红外图谱(FTIR) | 第26页 |
| 2.2.2 X射线光电子能谱(XPS) | 第26-27页 |
| 2.2.3 水接触角 | 第27页 |
| 2.2.4 原子力显微镜(AFM) | 第27-28页 |
| 2.2.5 扫描电子显微镜(SEM) | 第28页 |
| 2.2.6 免疫组织化学技术 | 第28-29页 |
| 2.2.7 甲苯胺蓝检测肝素释放量 | 第29-30页 |
| 2.3 功能层的体外抗凝血评价方法 | 第30-31页 |
| 2.3.1 血小板的粘附及激活检测 | 第30页 |
| 2.3.2 活化部分凝血酶时间检测 | 第30-31页 |
| 2.3.3 纤维蛋白原的吸附与变性 | 第31页 |
| 2.4 功能层的体外促(诱导)内皮评价方法 | 第31-33页 |
| 2.4.1 ECs体外静态培养 | 第31-32页 |
| 2.4.2 EPCs体外静态培养 | 第32页 |
| 2.4.3 SMCs体外静态培养 | 第32页 |
| 2.4.4 EPCs体外趋化 | 第32-33页 |
| 第3章 抗凝/促内皮双功能层的构建与表征 | 第33-43页 |
| 3.1 试剂和仪器 | 第33-34页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第33页 |
| 3.1.2 试剂的配置 | 第33页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第33-34页 |
| 3.2 钛表面抗凝/促内皮双功能层的构建 | 第34-35页 |
| 3.2.1 钛表面预处理 | 第34页 |
| 3.2.2 钛表面碱活化 | 第34页 |
| 3.2.3 碱活化钛表面多聚赖氨酸的固定 | 第34-35页 |
| 3.2.4 肝素与层粘连蛋白的共固定 | 第35页 |
| 3.3 钛表面抗凝/促内皮双功能层的定性表征及结果 | 第35-40页 |
| 3.3.1 FTIR结果 | 第35-36页 |
| 3.3.2 XPS结果 | 第36-37页 |
| 3.3.3 AFM结果 | 第37-39页 |
| 3.3.4 水接触角结果 | 第39-40页 |
| 3.4 钛表面抗凝/促内皮双功能层的定量表征及结果 | 第40-42页 |
| 3.4.1 层粘连蛋白定量检测 | 第40页 |
| 3.4.2 表面肝素活性检测—ATⅢ结合能力 | 第40-41页 |
| 3.4.3 肝素稳定性检测 | 第41-42页 |
| 3.5 本章小结 | 第42-43页 |
| 第4章 抗凝/促内皮双功能层的抗凝血评价及结果分析 | 第43-52页 |
| 4.1 试剂和仪器 | 第43页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第43页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第43页 |
| 4.1.3 实验前准备 | 第43页 |
| 4.2 血小板粘附及激活检测及结果分析 | 第43-49页 |
| 4.2.1 血小板粘附形态检测及结果分析—免疫荧光、SEM | 第43-46页 |
| 4.2.2 血小板粘附数量检测及结果分析—LDH | 第46-47页 |
| 4.2.3 血小板激活检测及结果分析—P选择素 | 第47-49页 |
| 4.3 活化部分凝血酶时间(APTT)检测及结果分析 | 第49-50页 |
| 4.4 纤维蛋白原吸附及变性检测及结果分析 | 第50-51页 |
| 4.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 第5章 抗凝/促内皮双功能层的促内皮化评价及结果分析 | 第52-63页 |
| 5.1 试剂和仪器 | 第52-53页 |
| 5.1.1 实验试剂 | 第52页 |
| 5.1.2 试剂的配置 | 第52页 |
| 5.1.3 实验器具 | 第52-53页 |
| 5.2 ECs的体外静态培养 | 第53-56页 |
| 5.2.1 ECs的提取 | 第53页 |
| 5.2.2 ECs体外静态培养 | 第53-54页 |
| 5.2.3 ECs粘附检测结果 | 第54-55页 |
| 5.2.4 ECs增殖毒性检测结果与分析 | 第55-56页 |
| 5.3 EPCs的体外静态培养 | 第56-59页 |
| 5.3.1 EPCs的提取 | 第56页 |
| 5.3.2 EPCs体外静态培养 | 第56-57页 |
| 5.3.3 EPCs粘附检测结果 | 第57-58页 |
| 5.3.4 EPCs增殖毒性检测结果与分析 | 第58-59页 |
| 5.4 SMCs的体外静态培养 | 第59-61页 |
| 5.4.1 SMCs的提取 | 第59页 |
| 5.4.2 SMCs体外静态培养 | 第59-60页 |
| 5.4.3 SMCs粘附检测结果 | 第60-61页 |
| 5.4.4 SMCs增殖毒性检测结果与分析 | 第61页 |
| 5.5 本章小结 | 第61-63页 |
| 第6章 多功能层的EPCs体外趋化的初步研究 | 第63-74页 |
| 6.1 间质细胞衍生因子(SDF-1α)引入 | 第63页 |
| 6.2 SDF-1α稳定性检测 | 第63-65页 |
| 6.3 SDF-1α引入生物功能层后的血液相容性评价 | 第65-67页 |
| 6.3.1 血小板粘附及激活结果与分析 | 第65-66页 |
| 6.3.2 活化部分凝血酶时间检测结果与分析 | 第66页 |
| 6.3.3 纤维蛋白原吸附及变性结果与分析 | 第66-67页 |
| 6.4 SDF-1α引入生物功能层后的细胞体外静态培养结果及分析 | 第67-70页 |
| 6.4.1 ECs体外静态培养结果与分析 | 第67-68页 |
| 6.4.2 EPCs体外静态培养结果与分析 | 第68-69页 |
| 6.4.3 SMCs体外静态培养结果与分析 | 第69-70页 |
| 6.5 SDF-1α引入生物功能层后的ECs迁移实验设计、结果与分析 | 第70-72页 |
| 6.5.1 ECs迁移实验设计 | 第70-71页 |
| 6.5.2 ECs迁移结果与分析 | 第71-72页 |
| 6.6 SDF-1α引入生物功能层后的EPCs体外趋化实验设计、结果及分析 | 第72-73页 |
| 6.6.1 EPCs体外趋化实验设计 | 第72页 |
| 6.6.2 EPCs体外趋化结果与分析 | 第72-73页 |
| 6.7 本章小结 | 第73-74页 |
| 第7章 层粘连蛋白、肝素及SDF-1α表面构建抗凝/诱导内皮多功能层机理的研究 | 第74-85页 |
| 7.1 Ti表面活化对生物相容性的影响 | 第74-75页 |
| 7.2 多聚赖氨酸构建官能团层的意义 | 第75-76页 |
| 7.3 层粘连蛋白/肝素/SDF-1 α生物功能层 | 第76-84页 |
| 7.3.1 三种生物分子的相互作用机理 | 第76-78页 |
| 7.3.2 三种生物分子对生物相容性的影响 | 第78-84页 |
| 7.4 本章小结 | 第84-85页 |
| 结论 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-96页 |
| 攻读硕士期间发表的论文及参与科研项目 | 第96页 |
