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猪呼吸道类和繁殖障碍类病毒性疫病多重PCR方法的建立及应用

摘要第6-10页
Abstract第10-14页
第一章 文献综述第15-41页
    1 七种猪呼吸道类和繁殖障碍类病毒概述第16-27页
        1.1 猪繁殖与呼吸综合征病毒第16-18页
        1.2 猪圆环病毒2型第18-19页
        1.3 猪细小病毒第19-21页
        1.4 猪伪狂犬病毒第21-22页
        1.5 猪流感病毒第22-24页
        1.6 猪日本乙型脑炎病毒第24-25页
        1.7 猪瘟病毒第25-27页
    2 猪呼吸道类和繁殖障碍类病毒分子生物学检测方法研究进展第27-40页
        2.1 猪繁殖与呼吸综合征病毒分子生物学检测方法研究进展第28-30页
        2.2 猪圆环病毒2型的分子生物学检测方法研究进展第30-31页
        2.3 猪细小病毒的分子生物学检测方法研究进展第31-33页
        2.4 猪伪狂犬病毒的分子生物学检测方法研究进展第33-35页
        2.5 猪流感病毒的分子生物学检测方法研究进展第35-37页
        2.6 猪日本乙型脑炎病毒的分子生物学检测方法研究进展第37-38页
        2.7 猪瘟病毒的分子生物学检测方法研究进展第38-40页
    3 本研究的目的和意义第40-41页
第二章 PRRSV、PCV2、PPV、PRV、SIV、JEV及 CSFV七重PCR检测方法的建立及应用研究第41-69页
    1 材料第41-45页
        1.1 病毒及细胞第41-42页
        1.2 病料来源第42页
        1.3 主要试剂第42-43页
        1.4 主要实验仪器第43页
        1.5 主要溶液的配制第43-45页
    2 方法第45-50页
        2.1 引物的设计与合成第45页
        2.2 细胞的复苏及病毒的增殖第45-46页
        2.3 病毒核酸的提取及c DNA模板的制备第46-47页
        2.4 病毒核酸的PCR扩增第47页
        2.5 PRRSV、PCV2、PPV、PRV、SIV、JEV和 CSFV目的基因的鉴定第47-48页
            2.5.1 目的基因的回收纯化第47页
            2.5.2 目的基因与p MD19-T载体的连接第47页
            2.5.3 重组质粒的转化第47-48页
            2.5.4 重组质粒的抽提及鉴定第48页
        2.6 单一病毒PCR检测方法的建立第48-49页
            2.6.1 单一病毒PCR反应体系的建立第48页
            2.6.2 单一病毒PCR反应条件的优化第48-49页
            2.6.3 单一病毒的PCR敏感性试验第49页
        2.7 七重PCR检测方法的建立第49-50页
            2.7.1 七重PCR反应体系的建立第49页
            2.7.2 七重PCR反应退火温度的优化第49页
            2.7.3 七重PCR敏感性试验第49页
            2.7.4 七重PCR特异性试验第49-50页
            2.7.5 七重PCR重复性试验第50页
            2.7.6 七重PCR试剂盒的组装第50页
            2.7.7 七重PCR对临床病料的检测第50页
    3 结果第50-66页
        3.1 病毒的增殖第50-53页
            3.1.1 PRV的增殖第50-51页
            3.1.2 PRRSV的增殖第51-52页
            3.1.3 JEV的增殖第52页
            3.1.4 SIV的增殖第52-53页
            3.1.5 PPV、PCV2、CSFV的增殖第53页
        3.2 单一病毒PCR检测方法的建立第53-60页
            3.2.1 单一病毒的PCR扩增及鉴定第53页
            3.2.2 单一病毒的PCR反应体系的建立第53-54页
            3.2.3 单一病毒的PCR反应条件的优化第54-57页
            3.2.4 单一病毒PCR敏感性检测第57-60页
        3.3 七重PCR检测方法的建立第60-66页
            3.3.1 七重PCR反应体系的建立第60-61页
            3.3.2 七重PCR反应退火温度的优化第61-62页
            3.3.3 七重PCR敏感性试验第62页
            3.3.4 七重PCR特异性试验第62-63页
            3.3.5 七重PCR重复性试验第63-64页
            3.3.6 七重PCR试剂盒的组装第64-65页
            3.3.7 七重PCR对临床病料的检测第65-66页
    4 讨论第66-68页
    5 结论第68-69页
第三章 规模化猪场猪呼吸道类和繁殖障碍类病毒部分流行毒株遗传变异研究第69-94页
    1 材料第70-71页
        1.1 病料来源第70页
        1.2 主要试剂第70-71页
        1.3 主要实验仪器第71页
        1.4 主要溶液的配制第71页
    2 方法第71-73页
        2.1 引物的设计与合成第71-72页
        2.2 PRV、PCV2、CSFV、PRRSV、JEV相关基因的克隆和遗传变异分析第72-73页
    3 结果第73-87页
        3.1 PRV gE基因的克隆和遗传变异分析第73-76页
        3.2 PCV2 全基因的基因的克隆和遗传变异分析第76-78页
        3.3 CSFV E2 基因的克隆和遗传变异分析第78-81页
        3.4 PRRSV ORF5及Nsp2 基因的克隆和遗传变异分析第81-85页
        3.5 JEV E基因的的克隆和遗传变异分析第85-87页
    4 讨论第87-93页
        4.1 PRV的遗传变异情况第87-88页
        4.2 PCV2 的遗传变异情况第88-89页
        4.3 CSFV的遗传变异情况第89-90页
        4.4 PRRSV的遗传变异情况第90-92页
        4.5 JEV的遗传变异情况第92-93页
    5 结论第93-94页
主要参考文献第94-103页
附录一 攻读硕士学位期间参与发表的论文第103-105页
附录二 本文用到的部分英文缩写及含义说明第105-107页
致谢第107-108页

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