| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 符号对照表 | 第13-14页 |
| 缩略语对照表 | 第14-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-32页 |
| 1.1 研究背景和意义 | 第18-19页 |
| 1.2 光学核素多模态分子影像简介 | 第19-24页 |
| 1.3 光学核素多模态分子影像在肿瘤成像应用研究进展 | 第24-28页 |
| 1.4 本文的主要工作和章节安排 | 第28-32页 |
| 第二章 光学核素多模态分子影像在肝癌/胃癌肿瘤模型上的应用相关研究基础 | 第32-42页 |
| 2.1 引言 | 第32页 |
| 2.2 光学核素多模态分子影像成像技术 | 第32-37页 |
| 2.2.1 CT成像技术 | 第32-34页 |
| 2.2.2 OMT成像技术 | 第34-36页 |
| 2.2.3 PET成像技术 | 第36-37页 |
| 2.3 小鼠肿瘤模型 | 第37-42页 |
| 2.3.1 注射细胞系构建的移植瘤模型 | 第37-38页 |
| 2.3.2 人源性肿瘤组织异种移植模型 | 第38-39页 |
| 2.3.3 基因编辑小鼠肿瘤模型 | 第39-42页 |
| 第三章 小鼠肝癌原位模型在体PET/BLT/FMT/CLT/CT融合成像 | 第42-70页 |
| 3.1 引言 | 第42-45页 |
| 3.1.1 各个单模态成像特点 | 第42页 |
| 3.1.2 多模态融合成像进展 | 第42-43页 |
| 3.1.3 本章的工作基础 | 第43-45页 |
| 3.2 多模态成像系统升级与性能测试 | 第45-54页 |
| 3.2.1 系统升级 | 第45-46页 |
| 3.2.2 性能测试 | 第46-54页 |
| 3.3 小鼠肝癌原位模型在体多模态成像 | 第54-57页 |
| 3.3.1 小鼠肝癌原位模型建立 | 第54-56页 |
| 3.3.2 多模态成像数据采集 | 第56-57页 |
| 3.4 在体多模态成像数据处理 | 第57-67页 |
| 3.4.1 多模态图像重建 | 第57-58页 |
| 3.4.2 多模态图像融合可视化 | 第58-66页 |
| 3.4.3 多模态成像结果验证 | 第66-67页 |
| 3.5 讨论 | 第67-68页 |
| 3.6 本章小结 | 第68-70页 |
| 第四章 小鼠胃癌皮下/原位模型在体CLI/PET凋亡成像 | 第70-96页 |
| 4.1 引言 | 第70-75页 |
| 4.1.1 细胞凋亡概述 | 第70页 |
| 4.1.2 细胞凋亡检测与成像 | 第70-74页 |
| 4.1.3 本章的工作基础 | 第74-75页 |
| 4.2 核素凋亡探针的构建 | 第75-77页 |
| 4.3 离体实验验证凋亡靶向CLI成像的可行性与有效性 | 第77-82页 |
| 4.3.1 MTT实验验证SGC7901/VCR细胞系的耐药性 | 第77-79页 |
| 4.3.2 流式细胞术验证化疗药物离体诱导的凋亡程度 | 第79-80页 |
| 4.3.3 离体CLI凋亡成像验证凋亡探针的靶向特异性及其信号强度与凋亡程度的相关性 | 第80-82页 |
| 4.4 在体实验验证凋亡靶向CLI成像的可行性与有效性 | 第82-93页 |
| 4.4.1 在体实验方案规划 | 第82-83页 |
| 4.4.2 构建胃癌耐药小鼠皮下/原位移植瘤模型 | 第83-85页 |
| 4.4.3 皮下模型在体CLI/PET凋亡成像 | 第85-88页 |
| 4.4.4 原位模型在体CLI/PET凋亡成像 | 第88-90页 |
| 4.4.5 皮下模型肿瘤大小监测 | 第90-91页 |
| 4.4.6 肿瘤组织切片TUNEL实验 | 第91-93页 |
| 4.4.7 统计分析 | 第93页 |
| 4.5 讨论 | 第93-94页 |
| 4.6 本章小结 | 第94-96页 |
| 第五章 总结和展望 | 第96-100页 |
| 5.1 本文工作总结 | 第96-97页 |
| 5.2 未来的工作展望 | 第97-100页 |
| 参考文献 | 第100-116页 |
| 致谢 | 第116-120页 |
| 作者简介 | 第120-124页 |
