| 中文摘要 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-19页 |
| 1.1 概述 | 第10-11页 |
| 1.2 木耳属遗传多样性研究进展 | 第11-18页 |
| 1.2.1 形态学研究 | 第11-12页 |
| 1.2.2 细胞学研究 | 第12页 |
| 1.2.3 蛋白质研究 | 第12-13页 |
| 1.2.4 分子生物学研究 | 第13-18页 |
| 1.2.4.1 限制性长度多态性（restriction fragment length polymorphisms，RFLP） | 第13-14页 |
| 1.2.4.2 随机扩增多态性（random amplified polymorphism DNA，RAPD） | 第14-15页 |
| 1.2.4.3 扩增片段长度多态性（amplified fragment length polymorphisms，AFLP） | 第15-16页 |
| 1.2.4.4 简单重复序列标记技术和简单重复序列间区标记技术 | 第16-17页 |
| 1.2.4.5 DNA 序列分析 | 第17-18页 |
| 1.3 木耳生产中存在的问题及研究意义 | 第18-19页 |
| 第二章 试验材料收集整理 | 第19-32页 |
| 2.1 材料 | 第19-23页 |
| 2.1.1 供试菌株 | 第19-22页 |
| 2.1.2 培养基 | 第22页 |
| 2.1.3 仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.4 试剂 | 第23页 |
| 2.2 方法 | 第23-27页 |
| 2.2.1 拮抗试验 | 第23页 |
| 2.2.2 ITS 序列分析 | 第23-27页 |
| 2.2.2.1 DNA 的提取 | 第23-24页 |
| 2.2.2.2 紫外分光光度计检测浓度 | 第24页 |
| 2.2.2.3 rDNA-ITS1 序列扩增 | 第24-25页 |
| 2.2.2.4 rDNA-ITS1 片段的回收、克隆和测序 | 第25-27页 |
| 2.3 结果与分析 | 第27-31页 |
| 2.3.1 拮抗 | 第27-30页 |
| 2.3.2 ITS 序列分析 | 第30-31页 |
| 2.4 小结与讨论 | 第31-32页 |
| 第三章 野生木耳培养特征 | 第32-64页 |
| 3.1 材料 | 第32页 |
| 3.1.1 供试菌株 | 第32页 |
| 3.1.2 培养基 | 第32页 |
| 3.1.3 仪器 | 第32页 |
| 3.2 方法 | 第32-33页 |
| 3.2.1 菌丝培养特征 | 第32页 |
| 3.2.2 菌丝生长速度 | 第32页 |
| 3.2.3 菌丝最适pH 值 | 第32页 |
| 3.2.4 菌丝耐高温特性 | 第32-33页 |
| 3.2.5 菌丝尖端细胞显微形态 | 第33页 |
| 3.3 结果与分析 | 第33-63页 |
| 3.3.1 菌丝培养特征 | 第33-35页 |
| 3.3.1.1 黑木耳菌丝培养特征 | 第33-34页 |
| 3.3.1.2 毛木耳菌丝培养特征 | 第34页 |
| 3.3.1.3 皱木耳菌丝培养特征 | 第34页 |
| 3.3.1.4 琥珀木耳菌丝培养特征 | 第34-35页 |
| 3.3.2 黑木耳菌丝生长速度 | 第35-43页 |
| 3.3.2.1 菌丝生长速度及菌株最适培养温度 | 第35-38页 |
| 3.3.2.2 毛木耳菌丝生长速度 | 第38-42页 |
| 3.3.2.3 皱木耳菌丝生长速度 | 第42-43页 |
| 3.3.2.4 琥珀木耳菌丝生长速度 | 第43页 |
| 3.3.3 菌丝最适pH 值 | 第43-53页 |
| 3.3.3.1 供试菌株在不同pH 下菌丝生长速度 | 第43-44页 |
| 3.3.3.2 黑木耳菌丝最适pH 值 | 第44-47页 |
| 3.3.3.3 毛木耳菌丝最适pH 值 | 第47-51页 |
| 3.3.3.4 皱木耳菌丝最适pH 值 | 第51-52页 |
| 3.3.3.5 琥珀木耳菌丝最适pH 值 | 第52-53页 |
| 3.3.4 菌丝耐高温特性 | 第53-57页 |
| 3.3.4.1 黑木耳菌丝耐高温特性 | 第53-55页 |
| 3.3.4.2 毛木耳菌丝耐高温特性 | 第55-57页 |
| 3.3.4.3 皱木耳耐高温特性 | 第57页 |
| 3.3.4.4 琥珀木耳耐高温特性 | 第57页 |
| 3.3.5 菌丝尖端细胞显微形态 | 第57-63页 |
| 3.3.5.1 黑木耳尖端细胞显微形态 | 第57-60页 |
| 3.3.5.2 毛木耳尖端细胞显微形态 | 第60-61页 |
| 3.3.5.3 皱木耳尖端细胞显微形态 | 第61-62页 |
| 3.3.5.4 琥珀木耳尖端细胞显微形态 | 第62-63页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第63-64页 |
| 第四章 纤维素酶、蛋白酶活性 | 第64-71页 |
| 4.1 材料 | 第64-65页 |
| 4.1.1 菌株 | 第64页 |
| 4.1.2 培养基 | 第64页 |
| 4.1.3 试剂 | 第64-65页 |
| 4.1.4 仪器 | 第65页 |
| 4.2 方法 | 第65-66页 |
| 4.2.1 试剂的准备 | 第65页 |
| 4.2.2 标准曲线制作 | 第65页 |
| 4.2.3 粗酶液制备 | 第65页 |
| 4.2.4 CMC 酶活性测定 | 第65-66页 |
| 4.2.5 FP 酶活性测定 | 第66页 |
| 4.2.6 蛋白酶活性测定 | 第66页 |
| 4.3 结果 | 第66-70页 |
| 4.3.1 黑木耳与琥珀木耳纤维素酶、蛋白酶活性 | 第67-68页 |
| 4.3.2 毛木耳纤维素酶、蛋白酶活性 | 第68-69页 |
| 4.3.3 皱木耳纤维素酶、蛋白酶活性 | 第69-70页 |
| 4.4 小结与讨论 | 第70-71页 |
| 第五章 酯酶同工酶电泳 | 第71-79页 |
| 5.1 材料 | 第71-73页 |
| 5.1.1 菌株 | 第71-72页 |
| 5.1.2 培养基 | 第72页 |
| 5.1.3 试剂 | 第72-73页 |
| 5.1.4 仪器 | 第73页 |
| 5.2 方法 | 第73-75页 |
| 5.2.1 试剂配制 | 第73-74页 |
| 5.2.2 菌丝培养 | 第74页 |
| 5.2.3 样品研磨 | 第74页 |
| 5.2.4 分离胶制备 | 第74页 |
| 5.2.5 浓缩胶制备 | 第74页 |
| 5.2.6 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第74-75页 |
| 5.2.6.1 点样 | 第74页 |
| 5.2.6.2 电泳 | 第74页 |
| 5.2.6.3 染色 | 第74-75页 |
| 5.3 结果 | 第75-79页 |
| 5.3.1 木耳酯酶同工酶酶谱 | 第75-76页 |
| 5.3.2 聚类分析 | 第76-77页 |
| 5.3.3 讨论 | 第77-79页 |
| 第六章 黑木耳种内IGS2-RFLP 分析 | 第79-84页 |
| 6.1 材料 | 第79-80页 |
| 6.1.1 菌株 | 第79页 |
| 6.1.2 培养基 | 第79页 |
| 6.1.3 试剂 | 第79页 |
| 6.1.4 仪器 | 第79-80页 |
| 6.1.5 分析软件 | 第80页 |
| 6.2 方法 | 第80-81页 |
| 6.2.1 菌丝培养 | 第80页 |
| 6.2.2 DNA 提取 | 第80页 |
| 6.2.3 rDNA IGS-PCR 扩增 | 第80-81页 |
| 6.2.4 酶切 | 第81页 |
| 6.2.5 电泳 | 第81页 |
| 6.2.6 条带统计 | 第81页 |
| 6.3 结果 | 第81-83页 |
| 6.3.1 黑木耳IGS2-RFLP | 第81-83页 |
| 6.3.2 黑木耳IGS2-RFLP 聚类分析 | 第83页 |
| 6.4 讨论 | 第83-84页 |
| 第七章 黑木耳农艺性状评价 | 第84-87页 |
| 7.1 材料 | 第84-85页 |
| 7.1.1 菌株 | 第84页 |
| 7.1.2 培养基 | 第84-85页 |
| 7.1.3 仪器 | 第85页 |
| 7.2 方法 | 第85页 |
| 7.3 结果 | 第85-87页 |
| 7.4 讨论 | 第87页 |
| 参考文献 | 第87-94页 |
| 英文摘要 | 第94-95页 |
| 附录1 ITS 序列 | 第96-103页 |
