| 中文摘要 | 第4-7页 |
| 英文摘要 | 第7-10页 |
| 目录 | 第11-14页 |
| 缩略词 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 第一章 LSD1、E-钙黏蛋白、N-钙黏蛋白在结肠癌组织中的表达及其意义 | 第17-28页 |
| 1.1 前言 | 第17页 |
| 1.2 材料与方法 | 第17-19页 |
| 1.2.1 实验标本 | 第18页 |
| 1.2.2 仪器设备 | 第18页 |
| 1.2.3 主要试剂及试剂盒 | 第18页 |
| 1.2.4 主要试剂配制 | 第18-19页 |
| 1.2.5 实验方法 | 第19页 |
| 1.2.6 统计分析 | 第19页 |
| 1.3 结果 | 第19-25页 |
| 1.3.1 LSD1、E-钙黏蛋白、N-钙黏蛋白在结肠癌和对照组中的表达 | 第19-22页 |
| 1.3.2 LSD1、E-钙黏蛋白、N-钙黏蛋白的表达与结肠癌临床病理特征的关系 | 第22-23页 |
| 1.3.3 LSD1与E-钙黏蛋白、N-钙黏蛋白在结肠癌中表达的关系 | 第23-24页 |
| 1.3.4 LSD1、E-钙黏蛋白、N-钙黏蛋白的表达与结肠癌的预后 | 第24-25页 |
| 1.4 讨论 | 第25-27页 |
| 1.5 小结 | 第27-28页 |
| 第二章 LSD1、E-钙黏蛋白、N-钙黏蛋白的表达与结肠癌细胞侵袭性的相关性 | 第28-46页 |
| 2.1 前言 | 第28-29页 |
| 2.2 材料与方法 | 第29-36页 |
| 2.2.1 仪器设备 | 第29-30页 |
| 2.2.2 主要试剂、耗材、试剂盒 | 第30-31页 |
| 2.2.3 主要溶液配制 | 第31-32页 |
| 2.2.4 细胞系及培养条件 | 第32页 |
| 2.2.5 Realtime RT-PCR实验 | 第32-34页 |
| 2.2.6 细胞Western-bloting实验 | 第34-35页 |
| 2.2.7 体外Transwell侵袭实验 | 第35页 |
| 2.2.8 统计分析 | 第35-36页 |
| 2.3 结果 | 第36-41页 |
| 2.3.1 Real-time RT-PCR实验结果 | 第36-37页 |
| 2.3.2 Western-bloting实验结果 | 第37-38页 |
| 2.3.3 Transwell细胞体外侵袭实验结果 | 第38-39页 |
| 2.3.4 LSD1,E-cadherin,N-cadherin的表达与细胞侵袭性的相关性分析 | 第39-41页 |
| 2.4 讨论 | 第41-45页 |
| 2.5 小结 | 第45-46页 |
| 第三章 抑制LSD1的表达对结肠癌细胞增殖、侵袭、凋亡的影响 | 第46-67页 |
| 3.1 前言 | 第46-48页 |
| 3.2 材料与方法 | 第48-56页 |
| 3.2.1 仪器设备 | 第48-49页 |
| 3.2.2 主要试剂、耗材、试剂盒 | 第49-50页 |
| 3.2.3 主要溶液配制 | 第50-52页 |
| 3.2.4 细胞系及培养条件 | 第52页 |
| 3.2.5 人LSD1 RNAi质粒构建 | 第52-53页 |
| 3.2.6 细胞转染及转染效率观察 | 第53-54页 |
| 3.2.7 RT-PCR、Western-bloting、Transwell体外侵袭实验 | 第54页 |
| 3.2.8 MTT细胞增殖实验 | 第54页 |
| 3.2.9 细胞凋亡实验 | 第54-56页 |
| 3.3 | 第56-63页 |
| 3.3.2 | 第56-57页 |
| 3.3.3 MTT细胞增殖实验检测不同浓度Tranylcypromine对SW620细胞生长的影响 | 第57-58页 |
| 3.3.4 MTT细胞增殖实验检测LSD1-siRNA、Tranylcypromine对SW620细胞生长的影响 | 第58-59页 |
| 3.3.5 Transwell体外细胞侵袭实验检测LSD1-siRNA、Tranylcypromine对SW620细胞侵袭性的影响 | 第59-60页 |
| 3.3.6 细胞凋亡实验检测LSD1-siRNA、Tranylcypromine对SW620细胞凋亡的影响 | 第60-61页 |
| 3.3.7 LSD1-siRNA、Tranylcypromine对SW620细胞中LSD1、E-cadherin、N-cadherin mRNA、蛋白表达的影响 | 第61-63页 |
| 3.4 讨论 | 第63-66页 |
| 3.5 小结 | 第66-67页 |
| 第四章 LSD1影响结肠癌细胞侵袭转移机制的初步研究 | 第67-81页 |
| 4.1 前言 | 第67-68页 |
| 4.2 材料与方法 | 第68-74页 |
| 4.2.1 仪器设备 | 第69页 |
| 4.2.2 主要试剂、耗材、试剂盒 | 第69-71页 |
| 4.2.3 细胞株 | 第71页 |
| 4.2.4 主要溶液配制 | 第71-72页 |
| 4.2.5 HumanE E-cadherin(CDH1)启动子区域引物 | 第72-73页 |
| 4.2.6 染色质免疫共沉淀(ChIP) | 第73-74页 |
| 4.2.7 统计分析 | 第74页 |
| 4.3 结果 | 第74-77页 |
| 4.3.1 LSD1蛋白与E-cadherin基因的启动子区域的结合丰度 | 第74-76页 |
| 4.3.2 E-cadherin启动子区域H3K4me2的表达水平 | 第76-77页 |
| 4.4 讨论 | 第77-80页 |
| 4.5 小结 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-93页 |
| 综述(一) | 第93-105页 |
| 参考文献 | 第100-105页 |
| 综述(二) | 第105-125页 |
| 参考文献 | 第115-125页 |
| 致谢 | 第125-126页 |
| 攻读学位期间的主要研究成果 | 第126-128页 |
