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伪狂犬病病毒DNA聚合酶入核转运的分子机制

摘要第5-6页
Abstract第6-7页
第一章 引言第13-33页
    1.1 PRV概况第13页
    1.2 PRV分类学第13页
    1.3 PRV形态结构和理化特征第13-15页
    1.4 PRV基因组及其编码产物第15-17页
        1.4.1 基因组和基因组成第15-16页
        1.4.2 衣壳蛋白第16页
        1.4.3 皮层蛋白第16页
        1.4.4 囊膜蛋白第16-17页
    1.5 PRV复制周期第17-25页
        1.5.1 吸附与侵入第17-18页
        1.5.2 病毒转录激活因子和转录级联第18-20页
        1.5.3 在PRV感染过程中宿主转录本的变化第20-21页
        1.5.4 潜伏期基因表达第21页
        1.5.5 DNA复制第21-22页
        1.5.6 核苷酸代谢第22-24页
        1.5.7 衣壳形成第24页
        1.5.8 DNA衣壳化第24-25页
        1.5.9 病毒释放第25页
    1.6 核定位信号的分类第25-27页
        1.6.1 经典核定位信号第25-26页
        1.6.2 Impβ2 识别的核定位信号第26-27页
        1.6.3 空间表位型核定位信号第27页
    1.7 蛋白质入核转运机制的研究进展第27-32页
        1.7.1 核质转运概述第27-28页
        1.7.2 Impα/β 入核通路第28-31页
        1.7.3 Snurportin-1 介导的入核通路第31页
        1.7.4 仅依赖于Impβ 的入核通路第31页
        1.7.5 仅依赖于Impβ2 的入核通路第31页
        1.7.6 其他入核通路第31-32页
    1.8 研究的目的和意义第32-33页
第二章 PRV DNA聚合酶UL42与UL30亚基的入核转运机制第33-60页
    2.1 材料和方法第35-43页
        2.1.1 细胞、病毒、载体、抗体和主要试剂第35-36页
        2.1.2 主要仪器设备第36页
        2.1.3 重组质粒构建第36-40页
        2.1.4 UL42单克隆抗体的制备第40页
        2.1.5 UL30多克隆抗体的制备第40页
        2.1.6 EGFP融合蛋白表达和定位分析第40-41页
        2.1.7 免疫荧光试验第41页
        2.1.8 免疫共沉淀和Western blot试验第41-42页
        2.1.9 蛋白表达和纯化第42页
        2.1.10 体外入核转运试验第42-43页
    2.2 结果第43-56页
        2.2.1 UL42与UL30多克隆抗体的制备第43-44页
        2.2.2 UL42 MAb效价测定及亚类鉴定第44-45页
        2.2.3 UL42在不存在其他病毒蛋白时的细胞定位第45页
        2.2.4 UL42包含一个双分型NLS第45-48页
        2.2.5 K354、R355和K367是UL42双分型NLS的关键残基第48-49页
        2.2.6 UL42与Impα3 和Impα4 相互作用第49-50页
        2.2.7 UL42与Impα3 和Impα4 的相互作用由UL42双分型NLS介导第50-51页
        2.2.8 UL42核定位是一个受体、温度、能量和NLS依赖的过程第51-52页
        2.2.9 UL42入核转运是由Impα/β 通路介导的第52-53页
        2.2.10 UL30核定位依赖于UL42第53-54页
        2.2.11 UL30 C端41个氨基酸残基是与UL42相互作用的关键区域第54-55页
        2.2.12 UL42双分型NLS是PRV DNA聚合酶入核转运的关键基序第55-56页
    2.3 讨论第56-60页
        2.3.1 疱疹病毒DNA聚合酶辅助亚基包含不同类型的NLS第57-58页
        2.3.2 疱疹病毒DNA聚合酶辅助亚基识别不同亚型的Impα第58页
        2.3.3 疱疹病毒DNA聚合酶催化亚基入核通路差异明显第58页
        2.3.4 PRV UL42双分型NLS的重要性第58-60页
第三章 PRV DNA聚合酶UL42亚基是病毒复制的必需基因第60-72页
    3.1 材料和方法第61-64页
        3.1.1 细胞、病毒、载体、抗体和主要试剂第61页
        3.1.2 主要仪器设备第61-62页
        3.1.3 UL42表达动力学分析第62页
        3.1.4 SiRNA干扰试验第62-63页
        3.1.5 细胞活力测定第63页
        3.1.6 Western blot试验第63页
        3.1.7 免疫荧光试验第63页
        3.1.8 PRV滴度测定第63-64页
        3.1.9 统计分析第64页
    3.2 结果第64-70页
        3.2.1 PRV复制过程中UL42的表达动力学第64-65页
        3.2.2 SiRNAs特异性抑制UL42的体外表达第65页
        3.2.3 SiRNAs细胞毒性作用检测第65-66页
        3.2.4 SiRNAs剂量依赖性抑制PRV感染后UL42的表达第66-67页
        3.2.5 UL42 siRNAs剂量依赖性抑制PRV的复制第67-68页
        3.2.6 下调UL42的表达抑制PRV的一步生长曲线第68-70页
    3.3 讨论第70-72页
第四章 全文结论第72-73页
参考文献第73-93页
致谢第93-94页
作者简历第94页

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