一.缩略语表 | 第5-6页 |
二.中文摘要 | 第6-9页 |
三.英文摘要 | 第9-12页 |
四.正文 | 第13-60页 |
(一) 前言 | 第13-15页 |
(二) 材料与方法 | 第15-22页 |
1.实验动物与分组 | 第15页 |
2.试剂来源 | 第15-16页 |
3.仪器 | 第16页 |
4.实验方法 | 第16-22页 |
4.1 大鼠左侧大脑中动脉线栓(MCAO)模型 | 第16页 |
4.2 侧脑室内注射 | 第16-17页 |
4.3 BrdU标记 | 第17页 |
4.4 冰冻组织切片的制备 | 第17页 |
4.5 研究断面 | 第17页 |
4.6 CV染色与脑梗塞体积的检测 | 第17-18页 |
4.7 免疫组织化学单标记 | 第18页 |
4.7.1 BrdU免疫组织化学染色 | 第18页 |
4.7.2 Tuj-1,DCX,BMP4,Noggin,β-catenin免疫组织化学染色 | 第18页 |
4.8 免疫组织化学双标记 | 第18-19页 |
4.9 免疫荧光标记和激光共聚焦扫描技术 | 第19页 |
4.10 免疫印迹(Western blot)实验 | 第19-20页 |
4.10.1 蛋白提取 | 第19页 |
4.10.2 Western blot | 第19-20页 |
4.11 细胞计数及统计学分析 | 第20-22页 |
4.11.1 应用人工方式计数的有关数据 | 第20页 |
4.11.2 Western blot半定量 | 第20页 |
4.11.3 数据的分析与统计 | 第20-22页 |
(三) 结果 | 第22-27页 |
1.缺血损伤后,大鼠纹状体内BMP4、Noggin和β-catenin的表达 | 第22-23页 |
1.1 大鼠脑缺血后,纹状体内源性BMP4~+细胞表达变化情况分析 | 第22页 |
1.2 大鼠脑缺血后,纹状体内源性Noggin~+细胞表达变化情况分析 | 第22页 |
1.3 大鼠脑缺血后,纹状体内源性β-catenin~+细胞表达变化情况分析 | 第22-23页 |
1.4 大鼠脑缺血后,Western blot分析纹状体内源性BMP4、Noggin和β-catenin蛋白表达变化情况 | 第23页 |
2.侧脑室内给予Bcl-2过表达质粒后BMP4、Noggin和β-catenin在缺血纹状体内的表达 | 第23页 |
3.大鼠脑缺血后缺血侧纹状体内源性BMP7的表达 | 第23-24页 |
4.侧脑室给予Bcl-2过表达质粒后缺血纹状体内BMP7表达变化情况分析 | 第24页 |
5.缺血再灌1d、3d后纹状体内BMP4、BMP7和β-catenin的表达 | 第24页 |
6.缺血再灌1d、3d后侧脑室给予Bcl-2过表达质粒纹状体内BMP4、BMP7和β-catenin的表达 | 第24页 |
7.缺血再灌3d后侧脑室同时给予β-catenin siRNA和Bcl-2过表达质粒纹状体内BMP4和β-catenin的表达 | 第24-25页 |
8.缺血再灌3d后侧脑室同时给予β-catenin siRNA和Bcl-2过表达质粒对梗塞体积的影响 | 第25页 |
9.β-catenin siRNA抑制大鼠缺血脑内神经元新生 | 第25-27页 |
9.1 Bcl-2增加SVZ神经前体细胞的数量 | 第25页 |
9.2 β-catenin siRNA减少SVZ神经前体细胞的数量 | 第25页 |
9.3 β-catenin siRNA抑制SVZ细胞向纹状体迁移 | 第25-26页 |
9.4 β-catenin siRNA抑制缺血侧纹状体内神经元新生 | 第26-27页 |
(四) 讨论 | 第27-34页 |
1.脑缺血后神经发生及活化机制 | 第27-28页 |
2.Bcl-2与成年脑内神经元发生 | 第28页 |
3.BMP4对神经系统发育和分化的影响 | 第28-30页 |
4.Noggin对神经系统发育和分化的影响 | 第30-31页 |
5.β-catenin信号对神经前体细胞的调控作用 | 第31-32页 |
6.Bcl-2过表达增加SVZ神经前体细胞数量、促进缺血侧纹状体的神经元分化与成熟 | 第32页 |
7.Bcl-2过表达促进缺血脑内神经元新生的机制分析 | 第32-34页 |
(五) 结论 | 第34-35页 |
(六) 图版说明 | 第35-54页 |
(七) 参考文献 | 第54-60页 |
五.综述 | 第60-105页 |
六.附件1 致谢 | 第105-107页 |
附件2 博士研究生期间发表及完成的文章 | 第106-107页 |