| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-23页 |
| 1 发菜研究现状 | 第11-14页 |
| 1.1 发菜的经济价值与生态学意义 | 第11-12页 |
| 1.2 发菜的分布与资源现状 | 第12页 |
| 1.3 发菜人工培养 | 第12-14页 |
| 2 蓝藻基因转移系统 | 第14-15页 |
| 2.1 蓝藻基因转移方法 | 第14-15页 |
| 2.2 质粒载体 | 第15页 |
| 2.3 分子标记和报告基因 | 第15页 |
| 3 MAAs研究进展 | 第15-21页 |
| 3.1 MAAs的性质和分子结构 | 第15-19页 |
| 3.2 MAAs的分布 | 第19-20页 |
| 3.3 MAAs的合成 | 第20-21页 |
| 3.4 MAAs的功能 | 第21页 |
| 4 MAAs与发菜的光形态建成 | 第21-22页 |
| 5 立题依据 | 第22-23页 |
| 第二章 发菜MAAs的类型鉴定 | 第23-30页 |
| 1 前言 | 第23-24页 |
| 2 实验材料与方法 | 第24-25页 |
| 2.1 实验材料及培养条件 | 第24页 |
| 2.2 MAAs的提取、纯化及光谱扫描 | 第24-25页 |
| 2.3 MAAs的HPLC检测 | 第25页 |
| 2.4 HPLC-MS分析 | 第25页 |
| 3 实验结果 | 第25-28页 |
| 3.1 发菜MAAs的扫描光谱 | 第25-26页 |
| 3.2 发菜MAAs的HPLC检测 | 第26-27页 |
| 3.3 LC-MS鉴定MAAs的分子量 | 第27-28页 |
| 4 讨论 | 第28-30页 |
| 第三章 借助模式蓝藻鱼腥藻PCC 7120鉴定发菜MAAs合成相关基因 | 第30-47页 |
| 1 前言 | 第30-31页 |
| 2 实验材料与方法 | 第31-38页 |
| 2.1 实验材料与培养条件 | 第31页 |
| 2.2 发菜总DNA提取方法 | 第31页 |
| 2.3 ORF1-2、ORF1-4和ORF1-5在鱼腥藻PCC 7120中表达的载体构建 | 第31-32页 |
| 2.4 大肠杆菌/鱼腥藻PCC 7120接合转移 | 第32-36页 |
| 2.5 鱼腥藻PCC 7120总DNA提取 | 第36页 |
| 2.6 Western Blot | 第36页 |
| 2.7 PSⅡ的最大光化学效率测定 | 第36-37页 |
| 2.8 MAAs的提取、纯化及光谱扫描 | 第37页 |
| 2.9 MAAs的HPLC检测 | 第37-38页 |
| 2.10 HPLC-MS分析 | 第38页 |
| 3 实验结果 | 第38-45页 |
| 3.1 鱼腥藻PCC 7120 ORF1-2、ORF1-4转基因株合成新物质的情况 | 第38-39页 |
| 3.2 鱼腥藻PCC 7120 ORF1-2、ORF1-4转基因株合成物质的鉴定 | 第39-41页 |
| 3.3 鱼腥藻PCC 7120 ORF1-5转基因株合成新物质的情况 | 第41-43页 |
| 3.4 鱼腥藻PCC 7120 ORF1-5转基因株所合成物质的鉴定 | 第43-44页 |
| 3.5 UV-B对转基因藻株光合活性的影响 | 第44-45页 |
| 4 讨论 | 第45-47页 |
| 第四章 发菜转基因体系的建立 | 第47-54页 |
| 1 前言 | 第47-48页 |
| 2 实验材料与方法 | 第48-49页 |
| 2.1 实验材料与培养条件 | 第48页 |
| 2.2 大肠杆菌/发菜接合转移方法 | 第48-49页 |
| 2.3 发菜总DNA提取方法 | 第49页 |
| 2.4 细菌荧光素酶(LuxAB)活性的测定 | 第49页 |
| 2.5 叶绿素a的测定 | 第49页 |
| 3 实验结果 | 第49-52页 |
| 3.1 转基因发菜的获得 | 第49-51页 |
| 3.2 转基因发菜的PCR及LuxAB活性检测 | 第51-52页 |
| 4 讨论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 在校期间发表的论文 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
