摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
英文缩写词 | 第7-10页 |
第1章 绪论 | 第10-18页 |
1.1 食管鳞癌简介 | 第10-11页 |
1.1.1 食管鳞癌的特征 | 第10页 |
1.1.2 食管鳞癌的治疗现状及进展 | 第10-11页 |
1.2 MicroRNA简介 | 第11-12页 |
1.2.1 MicroRNA的作用机制 | 第11页 |
1.2.2 MicroRNA与肿瘤治疗 | 第11-12页 |
1.2.3 MicroRNA-203在食管癌治疗中的应用 | 第12页 |
1.3 纳米载体系统简介 | 第12-15页 |
1.3.1 纳米载体的分类与发展 | 第12-14页 |
1.3.2 纳米载体系统递送miRNA的优势 | 第14页 |
1.3.3 细胞穿膜肽概述 | 第14-15页 |
1.3.4 O-羧甲基壳聚糖概述 | 第15页 |
1.4 本文的研究内容及意义 | 第15-18页 |
第2章 pH响应性纳米胶囊M-CTNs的制备与表征 | 第18-28页 |
2.1 实验材料 | 第18页 |
2.2 实验仪器 | 第18-19页 |
2.3 实验方法 | 第19-21页 |
2.3.1 M-CTNs的制备过程 | 第19页 |
2.3.2 B-CTNs及M-CTNs的粒径与表面电位 | 第19-20页 |
2.3.3 B-CTNs及M-CTNs的形态观察 | 第20页 |
2.3.4 琼脂糖凝胶电泳验证M-CTNs包载miR-203的能力 | 第20页 |
2.3.5 M-CTNs的血清稳定性检测 | 第20页 |
2.3.6 M-CTNs体外释放miR-203速率的测定 | 第20-21页 |
2.3.7 统计学分析 | 第21页 |
2.4 实验结果与讨论 | 第21-26页 |
2.4.1 M-CTNs的制备 | 第21页 |
2.4.2 M-CTNs各成分比例的优化 | 第21-22页 |
2.4.3 B-CTNs及M-CTNs的形态观察 | 第22-23页 |
2.4.4 M-CTNs包载miR-203的能力 | 第23-24页 |
2.4.5 M-CTNs的血清稳定性检测 | 第24页 |
2.4.6 M-CTNs的pH响应性能 | 第24-25页 |
2.4.7 M-CTNs体外释放miR-203的速率 | 第25-26页 |
2.5 本章小结 | 第26-28页 |
第3章 M-CTNs治疗食管鳞癌作用的研究 | 第28-50页 |
3.1 实验材料及溶液配制 | 第29-30页 |
3.1.1 实验材料 | 第29-30页 |
3.1.2 溶液配制 | 第30页 |
3.2 实验仪器 | 第30-31页 |
3.3 实验方法 | 第31-41页 |
3.3.1 食管鳞癌细胞Ec-109的传代培养 | 第31页 |
3.3.2 流式细胞仪检测M-CTNs转染效率 | 第31-32页 |
3.3.3 激光共聚焦显微镜观察M-CTNs纳米颗粒的溶酶体逃逸能力 | 第32-33页 |
3.3.4 Real-time PCR检测转染后细胞内miR-203的表达水平 | 第33-35页 |
3.3.5 Real-time PCR检测靶基因mRNA表达水平 | 第35-37页 |
3.3.6 Western Blot检测靶基因蛋白表达水平 | 第37-39页 |
3.3.7 CCK8法检测Ec-109细胞增殖能力 | 第39-40页 |
3.3.8 Transwell检测Ec-109细胞迁移能力 | 第40-41页 |
3.3.9 统计学分析 | 第41页 |
3.4 实验结果与讨论 | 第41-49页 |
3.4.1 M-CTNs的转染效率 | 第41页 |
3.4.2 M-CTNs的溶酶体逃逸功能 | 第41-43页 |
3.4.3 转染后细胞内miR-203的表达水平 | 第43-44页 |
3.4.4 靶基因E2F1、LASP-1 和Ran的mRNA表达水平 | 第44-45页 |
3.4.5 靶基因E2F1、LASP-1 和Ran的蛋白质表达水平 | 第45-46页 |
3.4.6 M-CTNs抑制Ec-109细胞的增殖能力 | 第46-47页 |
3.4.7 M-CTNs抑制Ec-109细胞的迁移能力 | 第47-49页 |
3.5 本章小结 | 第49-50页 |
结论 | 第50-52页 |
参考文献 | 第52-58页 |
攻读硕士学位期间所发表的学术论文 | 第58-60页 |
致谢 | 第60页 |