光亲和标记技术鉴别黄酮促葡萄糖吸收的靶点
| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 1 文献综述 | 第9-27页 |
| 1.1 小分子探针技术 | 第9-16页 |
| 1.1.1 小分子技术在新药发现中的作用 | 第9页 |
| 1.1.2 光亲和标记探针的研究进展 | 第9-14页 |
| 1.1.3 光亲和标记探针的应用 | 第14-16页 |
| 1.2 糖尿病及其并发症 | 第16-21页 |
| 1.2.1 糖尿病现状 | 第16-17页 |
| 1.2.2 糖尿病类型及发展阶段 | 第17-18页 |
| 1.2.3 糖尿病并发症 | 第18页 |
| 1.2.4 糖尿病的预防和治疗 | 第18-21页 |
| 1.3 黄酮类化合物降糖活性研究进展 | 第21-24页 |
| 1.3.1 黄酮类化合物 | 第21-22页 |
| 1.3.2 黄酮类化合物的降糖活性 | 第22-23页 |
| 1.3.3 黄酮类化合物联用降糖活性 | 第23-24页 |
| 1.4 本课题的研究内容、方案与意义 | 第24-27页 |
| 1.4.1 本课题的研究内容 | 第24页 |
| 1.4.2 本课题的研究方法 | 第24-25页 |
| 1.4.3 本课题的研究意义 | 第25-27页 |
| 2 黄酮类化合物的活性筛选 | 第27-34页 |
| 2.1 引言 | 第27页 |
| 2.2 实验材料和仪器 | 第27-28页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第27页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第27-28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-30页 |
| 2.3.1 5,6,7-三甲氧基黄酮的合成 | 第28页 |
| 2.3.2 促HepG2细胞的葡萄糖吸收活性筛选 | 第28-29页 |
| 2.3.3 HepG2细胞增殖抑制活性筛选 | 第29-30页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第30-33页 |
| 2.4.1 5,6,7-三甲氧基黄酮的合成 | 第30页 |
| 2.4.2 促HepG2细胞的葡萄糖吸收活性筛选 | 第30-31页 |
| 2.4.3 HepG2细胞增殖抑制活性筛选 | 第31-33页 |
| 2.5 本章小结 | 第33-34页 |
| 3 光亲和探针及报告基团的合成 | 第34-48页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 实验材料和仪器 | 第34-35页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第34页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第34-35页 |
| 3.3 实验方法 | 第35-40页 |
| 3.3.1 光亲和标记探针的合成 | 第35-38页 |
| 3.3.2 罗丹明B-N3的合成 | 第38-40页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第40-47页 |
| 3.4.1 光亲和探针的合成 | 第40-45页 |
| 3.4.2 罗丹明B-N3的合成 | 第45-47页 |
| 3.5 本章小结 | 第47-48页 |
| 4 光亲和探针标记HepG2细胞中靶蛋白 | 第48-62页 |
| 4.1 引言 | 第48页 |
| 4.2 实验材料和仪器 | 第48-49页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第48页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第48-49页 |
| 4.3 实验方法 | 第49-53页 |
| 4.3.1 探针活性的测定实验 | 第49-50页 |
| 4.3.2 HepG2细胞总蛋白的提取 | 第50-51页 |
| 4.3.3 HepG2细胞中蛋白的标记 | 第51-52页 |
| 4.3.4 光亲和探针标记的蛋白的富集及鉴定 | 第52-53页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第53-60页 |
| 4.4.1 光亲和探针BE-9 的活性测试 | 第53-55页 |
| 4.4.2 罗丹明B作为报告基团 | 第55-58页 |
| 4.4.3 生物素作为报告基团 | 第58-59页 |
| 4.4.4 探针BE-9 标记蛋白的富集及鉴定 | 第59-60页 |
| 4.5 本章小结 | 第60-62页 |
| 结论 | 第62-63页 |
| 展望 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-68页 |
| 附录A 部分化合物的图谱 | 第68-78页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-81页 |
