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酶解玉米芯制备低聚木糖的工艺研究

摘要第4-5页
Abstract第5-6页
第一章 引言第10-21页
    1.1 玉米芯第10页
    1.2 木聚糖第10-11页
    1.3 木聚糖酶第11-12页
        1.3.1 木聚糖酶的理化特性第11-12页
        1.3.2 木聚糖酶的作用机理第12页
    1.4 低聚木糖第12-16页
        1.4.1 低聚木糖主要成分及化学结构第12-13页
        1.4.2 木聚糖理化特性第13-14页
        1.4.3 低聚木糖的生理功能第14-15页
        1.4.4 低聚木糖的用途第15页
        1.4.5 低聚木糖的生产第15-16页
    1.5 低聚木糖分离纯化第16-19页
        1.5.1 低聚木糖脱色第17-18页
        1.5.2 杂蛋白分离第18页
        1.5.3 低聚木糖的分离第18-19页
    1.6 研究背景和意义第19-21页
第二章 木聚糖酶的制备及玉米芯的预处理第21-31页
    2.1 材料与仪器第21-22页
        2.1.1 材料第21页
        2.1.2 仪器第21页
        2.1.3 试剂第21-22页
    2.2 方法第22-24页
        2.2.1 固体培养基配方第22页
        2.2.2 单因素试验第22页
        2.2.3 酶解玉米芯工艺第22页
        2.2.4 木聚糖酶酶活测定方法第22页
        2.2.5 还原糖含量的测定方法第22-23页
        2.2.6 酶解产物薄层色谱定性检测第23-24页
    2.3 结果与讨论第24-30页
        2.3.1 木聚糖酶发酵条件优化第24-26页
        2.3.2 玉米芯预处理条件优化第26-30页
    2.4 本章小结第30-31页
第三章 酶解玉米芯工艺条件的优化第31-39页
    3.1 材料与仪器第31页
        3.1.1 材料第31页
        3.1.2 仪器第31页
        3.1.3 试剂第31页
    3.2 方法第31-32页
        3.2.1 单因素试验第32页
        3.2.2 正交试验第32页
        3.2.3 酶活力测定第32页
        3.2.4 还原糖测定第32页
        3.2.5 酶解产物薄层色谱定性检测第32页
    3.3 结果与分析第32-37页
        3.3.1 最优酶解pH值的确定第33-34页
        3.3.2 最佳酶解温度的确定第34-35页
        3.3.3 最优酶解时间的确定第35页
        3.3.4 最优酶量的选择第35-36页
        3.3.5 正交试验第36-37页
    3.4 本章小结第37-39页
第四章 低聚木糖的分离纯化第39-48页
    4.1 材料与仪器第39-40页
        4.1.1 材料第39页
        4.1.2 仪器第39页
        4.1.3 试剂第39-40页
    4.2 方法第40-42页
        4.2.1 还原糖的测定第40页
        4.2.2 脱色率的测定第40页
        4.2.3 还原糖得率计算第40页
        4.2.4 色值计算第40-41页
        4.2.5 超滤第41页
        4.2.6 活性炭脱色第41页
        4.2.7 葡聚糖凝胶柱层析分离第41-42页
        4.2.8 薄层色谱定性检测第42页
    4.3 结果与分析第42-47页
        4.3.1 超滤第42-43页
        4.3.2 活性炭脱色第43-46页
        4.3.3 SephadexG-25葡聚糖凝胶柱层析分离第46-47页
    4.4 本章小结第47-48页
第五章 结论与展望第48-50页
    5.1 结论第48页
    5.2 创新点第48页
    5.3 展望第48-50页
参考文献第50-55页
致谢第55-56页
作者简介第56页

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