摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 引言 | 第10-21页 |
1.1 玉米芯 | 第10页 |
1.2 木聚糖 | 第10-11页 |
1.3 木聚糖酶 | 第11-12页 |
1.3.1 木聚糖酶的理化特性 | 第11-12页 |
1.3.2 木聚糖酶的作用机理 | 第12页 |
1.4 低聚木糖 | 第12-16页 |
1.4.1 低聚木糖主要成分及化学结构 | 第12-13页 |
1.4.2 木聚糖理化特性 | 第13-14页 |
1.4.3 低聚木糖的生理功能 | 第14-15页 |
1.4.4 低聚木糖的用途 | 第15页 |
1.4.5 低聚木糖的生产 | 第15-16页 |
1.5 低聚木糖分离纯化 | 第16-19页 |
1.5.1 低聚木糖脱色 | 第17-18页 |
1.5.2 杂蛋白分离 | 第18页 |
1.5.3 低聚木糖的分离 | 第18-19页 |
1.6 研究背景和意义 | 第19-21页 |
第二章 木聚糖酶的制备及玉米芯的预处理 | 第21-31页 |
2.1 材料与仪器 | 第21-22页 |
2.1.1 材料 | 第21页 |
2.1.2 仪器 | 第21页 |
2.1.3 试剂 | 第21-22页 |
2.2 方法 | 第22-24页 |
2.2.1 固体培养基配方 | 第22页 |
2.2.2 单因素试验 | 第22页 |
2.2.3 酶解玉米芯工艺 | 第22页 |
2.2.4 木聚糖酶酶活测定方法 | 第22页 |
2.2.5 还原糖含量的测定方法 | 第22-23页 |
2.2.6 酶解产物薄层色谱定性检测 | 第23-24页 |
2.3 结果与讨论 | 第24-30页 |
2.3.1 木聚糖酶发酵条件优化 | 第24-26页 |
2.3.2 玉米芯预处理条件优化 | 第26-30页 |
2.4 本章小结 | 第30-31页 |
第三章 酶解玉米芯工艺条件的优化 | 第31-39页 |
3.1 材料与仪器 | 第31页 |
3.1.1 材料 | 第31页 |
3.1.2 仪器 | 第31页 |
3.1.3 试剂 | 第31页 |
3.2 方法 | 第31-32页 |
3.2.1 单因素试验 | 第32页 |
3.2.2 正交试验 | 第32页 |
3.2.3 酶活力测定 | 第32页 |
3.2.4 还原糖测定 | 第32页 |
3.2.5 酶解产物薄层色谱定性检测 | 第32页 |
3.3 结果与分析 | 第32-37页 |
3.3.1 最优酶解pH值的确定 | 第33-34页 |
3.3.2 最佳酶解温度的确定 | 第34-35页 |
3.3.3 最优酶解时间的确定 | 第35页 |
3.3.4 最优酶量的选择 | 第35-36页 |
3.3.5 正交试验 | 第36-37页 |
3.4 本章小结 | 第37-39页 |
第四章 低聚木糖的分离纯化 | 第39-48页 |
4.1 材料与仪器 | 第39-40页 |
4.1.1 材料 | 第39页 |
4.1.2 仪器 | 第39页 |
4.1.3 试剂 | 第39-40页 |
4.2 方法 | 第40-42页 |
4.2.1 还原糖的测定 | 第40页 |
4.2.2 脱色率的测定 | 第40页 |
4.2.3 还原糖得率计算 | 第40页 |
4.2.4 色值计算 | 第40-41页 |
4.2.5 超滤 | 第41页 |
4.2.6 活性炭脱色 | 第41页 |
4.2.7 葡聚糖凝胶柱层析分离 | 第41-42页 |
4.2.8 薄层色谱定性检测 | 第42页 |
4.3 结果与分析 | 第42-47页 |
4.3.1 超滤 | 第42-43页 |
4.3.2 活性炭脱色 | 第43-46页 |
4.3.3 SephadexG-25葡聚糖凝胶柱层析分离 | 第46-47页 |
4.4 本章小结 | 第47-48页 |
第五章 结论与展望 | 第48-50页 |
5.1 结论 | 第48页 |
5.2 创新点 | 第48页 |
5.3 展望 | 第48-50页 |
参考文献 | 第50-55页 |
致谢 | 第55-56页 |
作者简介 | 第56页 |