摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-12页 |
引言 | 第12-13页 |
1 文献综述 | 第13-24页 |
·镉的理化性质及用途 | 第13-14页 |
·镉含量的测定方法 | 第14页 |
·镉污染 | 第14-16页 |
·镉污染的来源 | 第14-15页 |
·水生动物镉污染的现状 | 第15-16页 |
·水生动物对镉的吸收、蓄积 | 第16-18页 |
·水生动物对镉的吸收途径及其机理 | 第16页 |
·水生动物对镉的蓄积 | 第16-18页 |
·镉对水生动物主要分子生态毒理指标酶类的影响 | 第18-21页 |
·镉对水生动物抗氧化酶系统的影响 | 第18-19页 |
·镉对水生动物谷胱甘肽硫转移酶的影响 | 第19-20页 |
·镉对水生动物磷酸酶的影响 | 第20-21页 |
·镉对水生动物的遗传毒性作用 | 第21-23页 |
·实验对象的选择 | 第23页 |
·本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
2 缢蛏对海水中Cd~(2+)的富集规律研究 | 第24-34页 |
·材料与方法 | 第24-28页 |
·实验材料 | 第24-25页 |
·主要实验试剂 | 第25页 |
·主要实验仪器 | 第25页 |
·生物饵料培养 | 第25页 |
·缢蛏的暂养 | 第25-26页 |
·积累实验 | 第26页 |
·重金属Cd 含量测定 | 第26-28页 |
·数据分析 | 第28页 |
·结果 | 第28-31页 |
·重金属Cd~(2+)在缢蛏贝体中的累积效应 | 第28-30页 |
·重金属Cd~(2+)在缢蛏不同组织中的累积效应 | 第30-31页 |
·讨论 | 第31-34页 |
3 Cd~(2+)对缢蛏消化腺和鳃组织SOD、CAT、GSH-Px 活性的影响 | 第34-47页 |
·材料与方法 | 第34-38页 |
·实验材料 | 第34页 |
·主要实验试剂 | 第34-35页 |
·主要实验仪器 | 第35页 |
·缢蛏的暂养 | 第35页 |
·染毒及样品处理 | 第35页 |
·SOD、CAT、GSH-Px 活性的测定 | 第35-37页 |
·数据统计分析 | 第37-38页 |
·结果 | 第38-43页 |
·Cd~(2+)对缢蛏消化腺和鳃SOD 活性的影响 | 第38-39页 |
·Cd~(2+)对缢蛏消化腺和鳃CAT 活性的影响 | 第39-41页 |
·Cd~(2+)对缢蛏消化腺和鳃GSH-Px 活性的影响 | 第41-43页 |
·讨论 | 第43-47页 |
·Cd~(2+)对缢蛏SOD 活性的影响 | 第43-44页 |
·Cd~(2+)对缢蛏CAT 活性的影响 | 第44-45页 |
·Cd~(2+)对缢蛏GSH-Px 活性的影响 | 第45-47页 |
4 Cd~(2+)对缢蛏消化腺和鳃组织GST、ACP、AKP 活性的影响 | 第47-58页 |
·材料与方法 | 第47-49页 |
·实验材料 | 第47页 |
·主要实验试剂 | 第47页 |
·主要实验仪器 | 第47页 |
·染毒及样品处理 | 第47-48页 |
·GST、ACP、AKP 活性的测定 | 第48-49页 |
·数据统计分析 | 第49页 |
·结果 | 第49-54页 |
·Cd~(2+)对缢蛏消化腺和鳃组织GST 活性的影响 | 第49-51页 |
·Cd~(2+)对缢蛏消化腺和鳃组织ACP 活性的影响 | 第51-52页 |
·Cd~(2+)对缢蛏消化腺和鳃组织AKP 活性的影响 | 第52-54页 |
·讨论 | 第54-58页 |
·Cd~(2+)缢蛏GST 活性的影响 | 第54-55页 |
·Cd~(2+)缢蛏ACP 活性的影响 | 第55-56页 |
·Cd~(2+)缢蛏AKP 活性的影响 | 第56-58页 |
5 Cd~(2+)胁迫下缢蛏消化腺和鳃组织细胞DNA 损伤的研究 | 第58-68页 |
·材料与方法 | 第58-62页 |
·实验材料 | 第58页 |
·主要试剂 | 第58-59页 |
·主要仪器 | 第59页 |
·试剂配制 | 第59-60页 |
·缢蛏的暂养 | 第60页 |
·毒物暴露及取样 | 第60-61页 |
·单细胞凝胶电泳实验 | 第61-62页 |
·结果 | 第62-66页 |
·Cd~(2+)对缢蛏消化腺细胞DNA 损伤结果 | 第62-64页 |
·Cd~(2+)对缢蛏鳃组织细胞DNA 损伤结果 | 第64-66页 |
·讨论 | 第66-68页 |
6 总结与展望 | 第68-70页 |
·结论 | 第68-69页 |
·展望 | 第69-70页 |
参考文献 | 第70-84页 |
在学研究成果 | 第84-85页 |
致谢 | 第85页 |