| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-16页 |
| 引言 | 第16-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-29页 |
| 1.副溶血弧菌 | 第17页 |
| 2 对虾常见疾病 | 第17-20页 |
| ·白斑综合征 | 第17-18页 |
| ·黄头病 | 第18页 |
| ·桃拉病 | 第18-19页 |
| ·肌肉白浊病 | 第19页 |
| ·急性肝胰腺坏死病 | 第19-20页 |
| 3. 噬菌体 | 第20-22页 |
| 4. 卤虫 | 第22-24页 |
| ·卤虫的应用 | 第22-23页 |
| ·卤虫的养殖概况 | 第23-24页 |
| 5.实时荧光定量PCR | 第24-25页 |
| ·实时荧光定量PCR优势 | 第24-25页 |
| ·荧光定量PCR方法 | 第25页 |
| ·相对荧光定量PCR | 第25页 |
| ·绝对荧光定量PCR | 第25页 |
| 6 蛋白诱导 | 第25-26页 |
| 7.基因转化方法 | 第26-28页 |
| ·转化 | 第26页 |
| ·共转化 | 第26-27页 |
| ·脂质体导入法 | 第27页 |
| ·粒子轰击细胞法 | 第27页 |
| ·直接显微注射 | 第27页 |
| ·电转化法 | 第27-28页 |
| 8. 感受态细胞 | 第28-29页 |
| 第二章溶源副溶血弧菌的筛选 | 第29-38页 |
| 1 材料与方法 | 第29-33页 |
| ·实验材料 | 第29-31页 |
| ·培养基 | 第29-30页 |
| ·仪器和试剂 | 第30页 |
| ·实验菌株 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-33页 |
| ·实验菌株的培养和细菌基因组DNA的提取 | 第31-32页 |
| ·AHPND相关副溶血弧菌质粒的PCR检测 | 第32-33页 |
| ·丝裂霉素C有效浓度的确定 | 第33页 |
| ·噬菌体溶源性感染菌株的筛选 | 第33页 |
| 2. 结果 | 第33-37页 |
| ·五株副溶血弧菌的AHPND相关质粒的PCR检测 | 第33-34页 |
| ·溶源性噬菌体释放的丝裂霉素C最佳浓度的确定 | 第34-35页 |
| ·溶源性副溶血弧菌的筛选 | 第35-37页 |
| 3.讨论 | 第37-38页 |
| 第三章 溶源噬菌体的分离与电镜观察 | 第38-50页 |
| 1 材料与方法 | 第38-41页 |
| ·实验材料 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-41页 |
| ·副溶血弧菌溶源噬菌体的分离 | 第38-39页 |
| ·噬菌体电镜观察 | 第39页 |
| ·两株副溶血弧菌抗生素敏感性测试 | 第39-40页 |
| ·两株副溶血弧菌的碳源利用情况 | 第40页 |
| ·人工感染实验 | 第40-41页 |
| 2.实验结果 | 第41-48页 |
| ·溶源噬菌体的电镜观察 | 第41-42页 |
| ·两株溶源性副溶血弧菌的抗生素敏感性 | 第42-43页 |
| ·碳源利用情况数据分析 | 第43-47页 |
| ·人工感染实验结果 | 第47-48页 |
| 3.讨论 | 第48-50页 |
| 第四章 副溶血弧菌对卤虫无节幼体的感染实验 | 第50-55页 |
| 1.材料和方法 | 第50-51页 |
| ·实验材料 | 第50页 |
| ·实验方法 | 第50-51页 |
| ·菌液的制备 | 第50页 |
| ·卤虫卵的孵化 | 第50-51页 |
| ·卤虫无节幼体的感染实验 | 第51页 |
| ·数据分析与处理 | 第51页 |
| 2 实验结果 | 第51-53页 |
| ·卤虫无节幼体感染实验结果 | 第51-52页 |
| ·副溶血弧菌对卤虫无节幼体的致病力 | 第52-53页 |
| 3.讨论 | 第53-55页 |
| 第五章 副溶血弧菌溶源噬菌体宿主范围检测 | 第55-60页 |
| 1.材料与方法 | 第55-58页 |
| ·实验材料 | 第55-56页 |
| ·实验试剂与器材 | 第55页 |
| ·实验菌株 | 第55-56页 |
| ·实验方法 | 第56-58页 |
| ·菌株的活化 | 第56-57页 |
| ·溶源噬菌体的提取 | 第57页 |
| ·噬菌体vp1 宿主范围的测定 | 第57页 |
| ·噬菌体vp2 宿主范围的测定 | 第57-58页 |
| 2.实验结果 | 第58-59页 |
| ·噬菌体vp1 宿主范围 | 第58页 |
| ·噬菌体vp2 宿主范围 | 第58-59页 |
| 3.讨论 | 第59-60页 |
| 第六章VPP19 质粒的转化 | 第60-71页 |
| 1.材料和方法 | 第60-67页 |
| ·实验材料 | 第60-61页 |
| ·实验方法 | 第61-67页 |
| ·pBAD-VPP19 质粒的提取 | 第61-62页 |
| ·提取质粒质量的验证 | 第62-63页 |
| ·SM10 和TSA-VII-2 两株菌感受态细胞的制备 | 第63-64页 |
| ·电击转化 | 第64页 |
| ·筛选阳性克隆 | 第64-66页 |
| ·阳性单克隆的诱导 | 第66页 |
| ·阳性克隆表达产物的SDS-PAGE | 第66-67页 |
| 2.实验结果 | 第67-70页 |
| ·质粒质量检测结果 | 第67页 |
| ·质粒pBAD-VPP19 的电转化 | 第67-69页 |
| ·阳性转化菌株的蛋白诱导表达 | 第69-70页 |
| 3.讨论 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-79页 |
| 致谢 | 第79页 |