| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 缩略词表 | 第7-11页 |
| 第一部分 文献综述 | 第11-28页 |
| 第一章 减毒鼠伤寒沙门菌概述 | 第11-20页 |
| 1. 鼠伤寒沙门菌感染宿主时其菌体内的协同调控关系 | 第11-13页 |
| 2. 减毒鼠伤寒沙门菌作为针对同源病原体的疫苗的研究 | 第13-15页 |
| 3. 减毒鼠伤寒沙门菌作为疫苗载体的研究 | 第15-16页 |
| 4. 减毒鼠伤寒沙门菌疫苗的免疫机制 | 第16-18页 |
| 5. 展望 | 第18-20页 |
| 第二章 黏膜免疫概述 | 第20-28页 |
| 1. 黏膜免疫系统的组成 | 第20-21页 |
| 2. 黏膜免疫系统的主要功能 | 第21-22页 |
| 3. 疫苗黏膜免疫途径 | 第22-24页 |
| 4. 提高黏膜疫苗免疫效果的方法 | 第24-26页 |
| 5. 问题与展望 | 第26页 |
| 6. 选题背景 | 第26-28页 |
| 第二部分 试验研究 | 第28-53页 |
| 第三章 鼠伤寒沙门菌全局调控基因(CRP,ENVZ,FIS,FUR,HILA,MLC,PHOP)缺失株的构建 | 第28-36页 |
| 1. 材料 | 第28-29页 |
| ·菌种和质粒 | 第28页 |
| ·主要试剂 | 第28-29页 |
| ·主要培养基及其配制 | 第29页 |
| ·主要仪器 | 第29页 |
| 2. 试验方法 | 第29-36页 |
| ·引物 | 第29-30页 |
| ·鼠伤寒沙门菌UK-1基因组DNA的提取 | 第30-31页 |
| ·拟缺失基因上下游序列的扩增及融合 | 第31页 |
| ·重组自杀性质粒的构建、转化和鉴定 | 第31-33页 |
| ·重组自杀性质粒的构建 | 第31页 |
| ·重组自杀性质粒电击转化宿主菌大肠杆菌c7232和c7213 | 第31-33页 |
| ·突变株的构建及鉴定 | 第33页 |
| ·试验结果 | 第33-35页 |
| ·讨论 | 第35-36页 |
| 第四章 鼠伤寒沙门菌全局调控基因缺失株免疫原性和免疫保护力的评价 | 第36-53页 |
| 1. 材料 | 第36页 |
| ·实验动物 | 第36页 |
| ·主要试剂 | 第36页 |
| ·相关溶液配制 | 第36页 |
| ·主要仪器 | 第36页 |
| 2. 试验方法 | 第36-42页 |
| ·鼠伤寒沙门菌突变株免疫小鼠 | 第37-38页 |
| ·免疫程序 | 第37页 |
| ·免疫剂量和免疫方法 | 第37-38页 |
| ·样品的采集与保存 | 第38-39页 |
| ·血清 | 第38页 |
| ·唾液 | 第38-39页 |
| ·阴道洗脱液 | 第39页 |
| ·粪便 | 第39页 |
| ·ELISA方法检测样品抗体水平 | 第39-42页 |
| ·包被抗原的制备 | 第39-41页 |
| ·各样品稀释倍数的确定 | 第41页 |
| ·ELISA方法检测样品中的抗体水平 | 第41-42页 |
| ·攻毒保护实验 | 第42页 |
| 3. 试验结果 | 第42-50页 |
| ·确定血清、唾液、阴道洗脱液和粪便上清液的最佳稀释倍数 | 第42-44页 |
| ·确定以OMP为包被抗原时的血清稀释倍数 | 第42页 |
| ·确定以LPS为包被抗原时的血清稀释倍数 | 第42-43页 |
| ·确定以OMP为包被抗原时的唾液稀释倍数 | 第43页 |
| ·确定以LPS为包被抗原时的唾液稀释倍数 | 第43页 |
| ·确定以OMP为包被抗原时的阴道洗脱液稀释倍数 | 第43页 |
| ·确定以LPS为包被抗原时的阴道洗脱液稀释倍数 | 第43-44页 |
| ·确定以OMP为包被抗原时的粪便稀释倍数 | 第44页 |
| ·确定以LPS为包被抗原时的粪便稀释倍数 | 第44页 |
| ·比较分析UK-1全局条基因突变株的系统性及黏膜免疫原性 | 第44-50页 |
| ·UK-1全局调控基因突变株诱导系统性体液免疫应答水平的比较 | 第44-48页 |
| ·UK-1全局调控基因突变株诱导黏膜免疫应答水平的比较 | 第48-50页 |
| ·攻毒保护力实验 | 第50页 |
| 4. 讨论 | 第50-51页 |
| 5 结论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 发表论文情况 | 第61页 |
