| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 综述 | 第11-30页 |
| 1 芸苔素的生物功能、生物合成以及与其他激素的相互作用 | 第11-19页 |
| ·芸苔素的生物功能 | 第11-13页 |
| ·芸苔素促进细胞生长分裂 | 第11页 |
| ·芸苔素控制细胞分化 | 第11-12页 |
| ·芸苔素调控植物育性及衰老进程 | 第12页 |
| ·芸苔素促进光合作用 | 第12页 |
| ·芸苔素提高植物的抗逆性 | 第12-13页 |
| ·芸苔素的生物合成途径及其突变体 | 第13-17页 |
| ·芸苔素的生物合成 | 第13-15页 |
| ·芸苔素生物合成过程中的突变体 | 第15-17页 |
| ·芸苔素与其他植物激素的相互作用 | 第17-19页 |
| ·芸苔素与生长素的相互作用 | 第17页 |
| ·芸苔素与赤霉素的相互作用 | 第17-18页 |
| ·芸苔素与脱落酸的相互作用 | 第18页 |
| ·芸苔素与细胞分裂素的相互作用 | 第18页 |
| ·芸苔素与乙烯的相互作用 | 第18-19页 |
| 2 茉莉素的生物功能及其信号传导途径 | 第19-24页 |
| ·茉莉素的生物功能 | 第19-20页 |
| ·参与植物的抗性反应 | 第19页 |
| ·参与植物个体间信号传递 | 第19页 |
| ·影响植物的萌发 | 第19-20页 |
| ·影响花粉的发育 | 第20页 |
| ·促进果实和块茎的成熟 | 第20页 |
| ·茉莉素的信号传导途径 | 第20-22页 |
| ·茉莉素与其他激素之间的相互作用 | 第22-24页 |
| ·茉莉素与水杨酸的相互作用 | 第22-23页 |
| ·茉莉素与乙烯的相互作用 | 第23页 |
| ·茉莉素与生长素的相互作用 | 第23-24页 |
| ·茉莉素与脱落酸的相互作用 | 第24页 |
| 3 内含子与基因表达调控 | 第24-28页 |
| ·植物基因内含子的结构特征 | 第24-25页 |
| ·植物基因内含子对基因表达调控的影响 | 第25-27页 |
| ·植物基因内含子影响基因表达模式 | 第25-26页 |
| ·植物基因内含子增强基因表达水平 | 第26-27页 |
| ·植物基因内含子驱动基因表达 | 第27-28页 |
| 4 本课题的研究目的与意义 | 第28-30页 |
| ·芸苔素与茉莉素之间的相互作用 | 第28-29页 |
| ·内含子对DWF4基因表达的影响 | 第29-30页 |
| 第二章 拟南芥DWF4基因影响茉莉素信号传导的研究 | 第30-44页 |
| 1 材料与试剂 | 第30-31页 |
| ·植物材料 | 第30页 |
| ·试剂 | 第30页 |
| ·培养基 | 第30-31页 |
| 2 方法 | 第31-32页 |
| ·拟南芥的种植与培养 | 第31页 |
| ·根长的测量和数据统计 | 第31-32页 |
| ·育性的统计分析 | 第32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-42页 |
| ·芸苔素生物合成受阻影响拟南芥对茉莉素的反应 | 第32-37页 |
| ·BRZ的浓度摸索及对Co1-0与coi1-2根的生长的影响 | 第32-33页 |
| ·Co1-0芸苔素生物合成受阻后对茉莉素表现为超敏感 | 第33-34页 |
| ·coi1-2芸苔素生物合成受阻部分恢复对茉莉素的敏感性 | 第34-37页 |
| ·DWF4对茉莉素调控拟南芥育性的影响 | 第37-42页 |
| ·dwf4coi1-2与coi1-2的生长状态比较 | 第37-40页 |
| ·coi1-2与dwf4coi1-2的育性比较 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-44页 |
| ·茉莉素敏感性实验中根长的测量 | 第42页 |
| ·环境对拟南芥突变体育性的影响 | 第42页 |
| ·茉莉素与芸苔素对拟南芥生长的影响 | 第42-43页 |
| ·dwf4coi1-2生长缓慢造成对育性统计的影响 | 第43-44页 |
| 第三章 拟南芥DWF4基因的内含子影响基因表达的初步探讨 | 第44-62页 |
| 1 材料与试剂 | 第44-45页 |
| ·植物材料 | 第44页 |
| ·酶与试剂盒 | 第44页 |
| ·菌株与质粒 | 第44页 |
| ·培养基 | 第44-45页 |
| 2 实验方法 | 第45-53页 |
| ·核酸的提取与检测 | 第45-46页 |
| ·DNA的提取 | 第45页 |
| ·RNA的提取 | 第45页 |
| ·测定所抽提RNA浓度的OD_(260)及OD_(260)/OD_(280)值 | 第45-46页 |
| ·检测所抽提的RNA质量 | 第46页 |
| ·目的片段的获得 | 第46-48页 |
| ·反转录 | 第46页 |
| ·DWF4全长基因和cDNA的扩增 | 第46-47页 |
| ·扩增片段的纯化 | 第47-48页 |
| ·pMcD4和pMD4植物转化载体的构建 | 第48-49页 |
| ·扩增片段及载体的酶切 | 第48页 |
| ·质粒酶切产物的纯化 | 第48-49页 |
| ·酶切产物的连接 | 第49页 |
| ·大肠杆菌的转化与鉴定 | 第49-51页 |
| ·大肠杆菌感受态的制备 | 第49页 |
| ·大肠杆菌热激法转化 | 第49-50页 |
| ·转化子的菌落PCR鉴定 | 第50页 |
| ·质粒的扩增 | 第50页 |
| ·质粒DNA的提取 | 第50-51页 |
| ·转化子的测序鉴定 | 第51页 |
| ·农杆菌的转化与鉴定 | 第51-52页 |
| ·农杆菌感受态的制备 | 第51页 |
| ·农杆菌电击法转化 | 第51-52页 |
| ·菌落PCR鉴定转化子 | 第52页 |
| ·拟南芥的浸染转化及鉴定 | 第52-53页 |
| ·拟南芥的培养 | 第52页 |
| ·农杆菌的培养 | 第52页 |
| ·转化菌液的制备 | 第52页 |
| ·植物的浸染转化 | 第52页 |
| ·转化植株的抗性筛选 | 第52-53页 |
| ·转化植株的PCR鉴定 | 第53页 |
| ·纯合转化植株的筛选 | 第53页 |
| ·T-DNA单拷贝株系的鉴定 | 第53页 |
| ·纯合株系的筛选 | 第53页 |
| ·基因表达分析 | 第53页 |
| 3 结果与分析 | 第53-60页 |
| ·pMcD4和pMD4转化载体的构建 | 第53-55页 |
| ·拟南芥总RNA的提取 | 第53-54页 |
| ·目的片段的扩增 | 第54页 |
| ·目的片段与载体pMYC2的酶切与连接 | 第54-55页 |
| ·大肠杆菌和农杆菌的转化 | 第55-57页 |
| ·pMcD4和pMD4转化大肠杆菌 | 第55-56页 |
| ·pMcD4和pMD4质粒转化农杆菌 | 第56-57页 |
| ·拟南芥的转化及遗传筛选 | 第57-58页 |
| ·农杆菌介导法转化拟南芥及转化植株的鉴定 | 第57页 |
| ·纯合单拷贝转基因植株的筛选与鉴定 | 第57-58页 |
| ·内含子对DWF4基因表达的影响 | 第58-60页 |
| ·转基因植株的形态 | 第58-59页 |
| ·转基因拟南芥的基因表达 | 第59-60页 |
| 4 讨论 | 第60-62页 |
| ·载体的构建与转化子的PCR检测 | 第60页 |
| ·单拷贝插入突变体的筛选与鉴定 | 第60页 |
| ·内含子对DWF4基因表达的影响 | 第60-62页 |
| 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-72页 |
| 附录A:缩略词表 | 第72-73页 |
| 附录B:主要试剂配置 | 第73-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 作者简历 | 第77页 |
