| 缩略语表 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-12页 |
| 材料与方法 | 第12-34页 |
| 1. 鸡胚处理 | 第12-13页 |
| 2. 鸡胚生存能力检测 | 第13页 |
| 3. 石蜡切片 | 第13-15页 |
| 4. H-E染色 | 第15页 |
| 5. 活性氧检测 | 第15-16页 |
| 6. 脂质过氧化检测 | 第16-17页 |
| 7. 超氧化物岐化酶(SOD)活性检测 | 第17-18页 |
| 8. 谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)活性检测 | 第18-19页 |
| 9. 谷胱甘肽(GSSG)含量检测 | 第19-21页 |
| 10. 全胚免疫荧光检测5-甲基胞嘧啶含量 | 第21-22页 |
| 11. Western blot检测DNMT1和DNMT3a蛋白表达 | 第22-25页 |
| 12. HPLC检测SAM和SAH | 第25-26页 |
| 13. 鸡胚内mi-124a水平的测定 | 第26-29页 |
| 14. 免疫组化检测(SP)检测方法 | 第29页 |
| 15 鸡胚电转(in ovo electroporation) | 第29-33页 |
| 16. 生物信息学分析 | 第33页 |
| 17. 统计学处理 | 第33-34页 |
| 结果 | 第34-50页 |
| 1. HCY对鸡胚生存力的影响 | 第34-35页 |
| 2. HCY对鸡胚神经管的影响 | 第35-36页 |
| 3. HCY处理后氧化应激相关指标的变化 | 第36-40页 |
| 4. HCY导致鸡胚基因组DNA的整体低甲基化 | 第40-41页 |
| 5. HCY导致DNMT1和DNMT3a表达减少 | 第41-42页 |
| 6. HCY对SAM和SAH含量的影响 | 第42-43页 |
| 7. HCY对miR-124表达的影响 | 第43-44页 |
| 8. HCY对SCP1、Pax6和Tuj1表达的影响 | 第44-46页 |
| 9. 敲低或过表达miR-124对神经管的影响 | 第46-47页 |
| 10. 敲低或过表达miR-124对SCP1、Pax6和Tuj1表达的影响 | 第47-50页 |
| 讨论 | 第50-54页 |
| 1. HCY导致的氧化应激与DNA甲基化的关系 | 第50-51页 |
| 2. HCY干扰一碳代谢与DNA甲基化的关系 | 第51-52页 |
| 3. HCY可能通过表观遗传修饰下调miR-124的表达 | 第52-53页 |
| 4. miR-124在神经管发生中的作用 | 第53页 |
| 5. HCY导致NTDs的可能的分子机制 | 第53-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 附录 | 第60-77页 |
| 综述一 | 第77-87页 |
| 参考文献 | 第82-87页 |
| 综述二 | 第87-95页 |
| 参考文献 | 第92-95页 |
| 个人简历 | 第95-96页 |
| 博士期间发表文章 | 第96-97页 |
| 致谢 | 第97页 |
