| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第10-21页 |
| 1.非生物胁迫诱导表观遗传变化 | 第10-12页 |
| 1.1 DNA甲基化调控植物非生物胁迫响应 | 第10-11页 |
| 1.2 组蛋白修饰调控植物非生物胁迫响应 | 第11页 |
| 1.3 小RNA(miRNA)调控植物非生物胁迫响应 | 第11页 |
| 1.4 染色质重塑调控植物非生物胁迫响应 | 第11-12页 |
| 2.PcG和 Trx G蛋白家族研究进展 | 第12-15页 |
| 2.1 Polycomb group(PcG)和Trithorax group(Trx G)蛋白家族 | 第12-13页 |
| 2.2 PcG和 TrxG蛋白家族调控植物响应外界环境信号 | 第13-14页 |
| 2.3 拟南芥Trx蛋白家族研究进展 | 第14-15页 |
| 3.脱落酸信号转导研究进展 | 第15-17页 |
| 3.1 植物激素脱落酸信号转导通路 | 第15-16页 |
| 3.2 拟南芥PP2C蛋白家族AHG3 的研究进展 | 第16-17页 |
| 4.植物H3K4 三甲基化修饰的功能 | 第17-19页 |
| 4.1 植物H3K4 甲基化修饰在全基因组范围内的分布 | 第17页 |
| 4.2 植物H3K4me3 调控转录延伸过程 | 第17-19页 |
| 4.3 植物H3K4me3和RNA聚合酶lI在干旱胁迫记忆过程中的作用 | 第19页 |
| 5.研究的意义和目的 | 第19-21页 |
| 材料与方法 | 第21-44页 |
| 1.实验材料 | 第21-23页 |
| 1.1 植物材料和培养条件 | 第21页 |
| 1.2 质粒和菌种 | 第21页 |
| 1.3 主要试剂 | 第21-22页 |
| 1.4 主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.实验方法 | 第23-44页 |
| 2.1 T-DNA突变体鉴定 | 第23-25页 |
| 2.2 拟南芥生理实验的具体操作步骤 | 第25-26页 |
| 2.3 β-葡萄糖苷酸酶（GUS）染色实验 | 第26-31页 |
| 2.4 基因表达水平鉴定实验 | 第31-33页 |
| 2.5 亚细胞定位 | 第33-36页 |
| 2.6 回补系植株和过表达植株的构建 | 第36页 |
| 2.7 蛋白水平检测实验[111] | 第36-39页 |
| 2.8 转录组测序分析（RNA-Seq）实验 | 第39页 |
| 2.9 染色质免疫共沉淀(ChIP-qPCR)实验[113] | 第39-44页 |
| 结果与分析 | 第44-72页 |
| 1.拟南芥atx4和atx5 功能缺失突变体鉴定 | 第44-47页 |
| 2.拟南芥ATX4和ATX5 在植物生长发育中起作用 | 第47-49页 |
| 3.拟南芥ATX4和ATX5在ABA诱导的气孔闭合过程中的作用 | 第49-52页 |
| 4.拟南芥ATX4和ATX5 在旱胁迫应答中的功能 | 第52-55页 |
| 5.拟南芥ATX4和ATX5 的时空表达特征及亚细胞定位 | 第55-57页 |
| 6.拟南芥ATX4和ATX5 是特异性的H3K4 甲基转移酶 | 第57-60页 |
| 7.拟南芥ATX4和ATX5 对转录调控的影响 | 第60-64页 |
| 8.拟南芥ATX4和ATX5 部分功能冗余 | 第64-67页 |
| 9.拟南芥AGH3是ATX4和ATX5 遗传学上的下游基因 | 第67-68页 |
| 10.ATX4和ATX5 调控AHG3 位点的H3K4me3 甲基化 | 第68-72页 |
| 讨论 | 第72-76页 |
| 结论 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-84页 |
| 附录 | 第84-103页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
| 在学期间公开发表论文及著作情况 | 第104页 |
