摘要 | 第6-7页 |
abstract | 第7-8页 |
英文缩略表 | 第12-13页 |
第一章 引言 | 第13-20页 |
1.1 伪狂犬病概述 | 第13页 |
1.1.1 伪狂犬病 | 第13页 |
1.1.2 伪狂犬病病毒的历史 | 第13页 |
1.2 伪狂犬病病毒的分子生物学 | 第13-16页 |
1.2.1 伪狂犬病病毒结构特征 | 第13-14页 |
1.2.2 疱疹病毒的复制 | 第14-16页 |
1.2.3 伪狂犬病病毒感染机制 | 第16页 |
1.3 伪狂犬病病毒潜伏感染研究进展 | 第16-17页 |
1.4 疱疹病毒miRNA研究进展 | 第17-18页 |
1.5 BAC/galK重组系统原理与应用 | 第18-19页 |
1.6 本研究的目的和意义 | 第19-20页 |
第二章 LLT启动子缺失突变病毒的构建拯救及其体外生物学特性分析 | 第20-47页 |
2.1 材料与方法 | 第20-31页 |
2.1.1 病毒、细胞、质粒和菌株 | 第20页 |
2.1.2 主要工具酶和试剂 | 第20-21页 |
2.1.3 主要仪器设备 | 第21-22页 |
2.1.4 常用试剂的配制 | 第22页 |
2.1.5 常用培养基的配制 | 第22-23页 |
2.1.6 本章节引物设计 | 第23-24页 |
2.1.7 缺失LLT启动子突变病毒相关供体质粒的构建 | 第24-27页 |
2.1.8 正筛选SW102-BAC-galk的构建 | 第27-28页 |
2.1.9 负筛选系统 | 第28-30页 |
2.1.10 突变病毒拯救 | 第30页 |
2.1.11 突变病毒体外生物学特性分析 | 第30-31页 |
2.2 结果 | 第31-45页 |
2.2.1 pB-L1-R1质粒的构建及鉴定 | 第31页 |
2.2.2 pB-L1-cHS4-R1质粒的构建及鉴定 | 第31-32页 |
2.2.3 pB-L1-cHS4-R2质粒的构建与鉴定 | 第32-33页 |
2.2.4 pB-L1-CMVp-R1质粒的构建及鉴定 | 第33-34页 |
2.2.5 pB-L1-BGH-R3 质粒的构建及鉴定 | 第34-35页 |
2.2.6 pB-L1-cHS4-BGH-R3质粒的构建及鉴定 | 第35-36页 |
2.2.7 GalK基因的获得 | 第36页 |
2.2.8 正筛选SW102-BAC-galk鉴定结果 | 第36页 |
2.2.9 负筛选SW102-BAC-△LAP1鉴定结果 | 第36-37页 |
2.2.10 负筛选SW102-BAC-cHS4-△LAP1a鉴定结果 | 第37-38页 |
2.2.11 负筛选SW102-BAC-cHS4-△LAP1b鉴定结果 | 第38页 |
2.2.12 负筛选SW102-BAC-CMVp-△LAP1鉴定结果 | 第38-39页 |
2.2.13 负筛选SW102-BAC-△LAP1/P2 鉴定结果 | 第39-40页 |
2.2.14 负筛选SW102-BAC-cHS4-△LAP1/P2鉴定结果 | 第40页 |
2.2.15 拯救突变病毒 | 第40-44页 |
2.2.16 突变病毒体外生物学特性分析结果 | 第44-45页 |
2.3 讨论 | 第45-47页 |
第三章 启动子缺失突变病毒体内外转录 LLT相关分子的特征分析 | 第47-63页 |
3.1 材料与方法 | 第47-52页 |
3.1.1 病毒与细胞 | 第47页 |
3.1.2 工具酶、试剂、仪器设备以及培养基 | 第47页 |
3.1.3 实验动物 | 第47页 |
3.1.4 本章节引物设计 | 第47-49页 |
3.1.5 突变病毒感染Vero细胞LLT表达特征的研究 | 第49-50页 |
3.1.6 双缺失启动子突变病毒感染小鼠致病性及其组织中LLT表达特征研究 | 第50-51页 |
3.1.7 突变病毒感染Vero细胞miRNA表达特征的研究 | 第51-52页 |
3.2 结果 | 第52-61页 |
3.2.1 突变病毒感染Vero细胞LLT表达特征 | 第52-56页 |
3.2.2 双缺失启动子突变病毒感染小鼠致病性实验 | 第56页 |
3.2.3 双缺失启动子突变病毒感染小鼠组织的LLT表达特征 | 第56-58页 |
3.2.4 JS-2012感染Vero细胞miRNA表达特征 | 第58-59页 |
3.2.5 突变病毒感染Vero细胞miRNA表达特征 | 第59-61页 |
3.3 讨论 | 第61-63页 |
第四章 全文结论 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-70页 |
附录 | 第70-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
作者简历 | 第75页 |