| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 序言 | 第9-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-33页 |
| 1.1 突触与突触可塑性 | 第13-17页 |
| 1.1.1 长时程增强（long-term potentiation，LTP）与长时程抑制（long-termdepression，LTD） | 第14页 |
| 1.1.2 稳态突触可塑性（homeostatic synaptic plasticity，HSP） | 第14-17页 |
| 1.1.2.1 整体稳态突触可塑性（global homeostatic synaptic plasticity） | 第15-16页 |
| 1.1.2.2 局部稳态突触可塑性（local homeostatic synaptic plasticity） | 第16-17页 |
| 1.2 突触缩放（Synaptic scaling） | 第17-20页 |
| 1.2.1 突触放大（Scaling up） | 第19-20页 |
| 1.2.2 突触缩小（Scaling down） | 第20页 |
| 1.3 稳态异常可能导致的疾病 | 第20-21页 |
| 1.4 稳态可塑性的研究模型 | 第21-23页 |
| 1.4.1 体外研究模型 | 第21-22页 |
| 1.4.2 在体研究模型 | 第22-23页 |
| 1.5 离子型谷氨酸盐受体 | 第23-32页 |
| 1.5.1 NMDA受体 | 第23-24页 |
| 1.5.2 AMPA受体 | 第24-32页 |
| 1.5.2.1 AMPA受体结构 | 第24-26页 |
| 1.5.2.2 AMPA受体转运 | 第26-32页 |
| 1.6 本研究拟解决的问题 | 第32-33页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第33-41页 |
| 2.1 实验动物、试剂与仪器 | 第33-35页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第33页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第33-34页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第34-35页 |
| 2.2 实验方法 | 第35-41页 |
| 2.2.1 小鼠基因型鉴定 | 第35-37页 |
| 2.2.2 神经元细胞培养 | 第37页 |
| 2.2.3 细胞免疫染色 | 第37-38页 |
| 2.2.4 电生理记录 | 第38页 |
| 2.2.5 水迷宫 | 第38-39页 |
| 2.2.6 情景恐惧记忆 | 第39页 |
| 2.2.7 显微镜设置和图像分析 | 第39-40页 |
| 2.2.8 统计学分析 | 第40-41页 |
| 第三章 实验结果与讨论 | 第41-55页 |
| 第一部分：GluA1/2 CTD差异调节突触缩放 | 第41-48页 |
| 3.1.1 GluA1~(C2KI)与GluA2~(C1KI)转基因鼠的基因型测定 | 第41-42页 |
| 3.1.2 GluA1~(C2KI)小鼠与GluA2~(C1KI)小鼠基本的突触传递 | 第42-43页 |
| 3.1.3 GluA2 CTD对scaling up至关重要 | 第43-44页 |
| 3.1.4 GluA2 CTD可能是通过调节AMPAR转运从而调控scaling up | 第44-45页 |
| 3.1.5 在局部稳态可塑性中GluA1~(C2KI)和GluA2~(C1KI)表现正常 | 第45-46页 |
| 3.1.6 GluA1 CTD对scaling down重要 | 第46-48页 |
| 第二部分：GluA1/2 CTD在赫布可塑性中的功能研究 | 第48-50页 |
| 3.2.1 GluA1~(C2KI)小鼠的空间记忆存在缺陷 | 第48-49页 |
| 3.2.2 GluA2~(C1KI)小鼠的恐惧记忆存在缺陷 | 第49-50页 |
| 讨论 | 第50-55页 |
| 参考文献 | 第55-67页 |
| 硕士期间发表论文 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 作者简介 | 第69页 |
