| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第9-19页 |
| 1.1 模式识别受体概述 | 第9-12页 |
| 1.1.1 模式识别受体的定义 | 第9页 |
| 1.1.2 模式识别受体的分类 | 第9-12页 |
| 1.2 新型模式识别受体家族-DM9家族蛋白概述 | 第12-13页 |
| 1.3 DM9家族蛋白的研究进展 | 第13-17页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第17-19页 |
| 2 实验材料与方法 | 第19-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-23页 |
| 2.1.1 实验动物与菌株 | 第19页 |
| 2.1.2 试剂耗材、实验仪器以及引物信息 | 第19-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-32页 |
| 2.2.1 长牡蛎免疫刺激以及样品收集 | 第23-24页 |
| 2.2.2 长牡蛎组织总RNA的提取及cDNA的合成 | 第24页 |
| 2.2.3 基因克隆及序列分析 | 第24-26页 |
| 2.2.4 荧光实时定量PCR检测 | 第26-28页 |
| 2.2.5 长牡蛎CgDM9CPs重组蛋白的纯化、复性 | 第28-29页 |
| 2.2.6 多克隆抗体的制备及Westernblot分析 | 第29-30页 |
| 2.2.7 长牡蛎CgDM9CPs重组蛋白的PAMPs结合实验 | 第30-31页 |
| 2.2.8 长牡蛎CgDM9CPs重组蛋白的微生物结合实验 | 第31页 |
| 2.2.9 长牡蛎CgDM9CPs重组蛋白的凝菌实验 | 第31-32页 |
| 2.2.10 长牡蛎CgDM9CPs重组蛋白的促进血细胞吞噬实验 | 第32页 |
| 2.2.11 长牡蛎CgDM9CPs重组蛋白抑制微生物生长的活性检测 | 第32页 |
| 2.3 数据统计分析 | 第32-33页 |
| 3 结果 | 第33-53页 |
| 3.1 CgDM9CPs的鉴定及分子特征 | 第33-36页 |
| 3.2 CgDM9CPs的组织分布 | 第36-37页 |
| 3.3 CgDM9CPs对Mannose和V.s刺激的响应 | 第37-39页 |
| 3.4 CgDM9CPs的重组蛋白制备 | 第39-42页 |
| 3.5 CgDM9CPs的亚细胞定位 | 第42-43页 |
| 3.6 CgDM9CPs的重组蛋白与病原相关模式分子(PAMPs)的结合活性 | 第43-45页 |
| 3.7 CgDM9CPs的重组蛋白凝集微生物的活性 | 第45-47页 |
| 3.8 CgDM9CPs的重组蛋白与微生物的结合活性 | 第47-49页 |
| 3.9 CgDM9CPs的重组蛋白抑制微生物的生长的活性 | 第49-51页 |
| 3.10 CgDM9CP-5的重组蛋白促进血细胞吞噬的活性 | 第51-53页 |
| 4 讨论 | 第53-57页 |
| 4.1 长牡蛎DM9家族基因的基本分子特征 | 第53页 |
| 4.2 长牡蛎DM9家族蛋白的组织分布 | 第53-54页 |
| 4.3 长牡蛎DM9家族蛋白在病原识别方面发挥重要作用 | 第54-55页 |
| 4.4 CgDM9CPs主要位于长牡蛎血细胞细胞膜上 | 第55页 |
| 4.5 长牡蛎DM9结构域蛋白在促进长牡蛎血细胞吞噬过程中起到重要作用 | 第55-57页 |
| 5 结论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第63-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
