| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第10-13页 |
| 第一部分 HUVEC细胞氚水染毒后差异表达基因筛选 | 第13-36页 |
| 1.1 实验材料 | 第13-14页 |
| 1.1.1 主要试剂及耗材 | 第13-14页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第14页 |
| 1.2 实验方法 | 第14-21页 |
| 1.2.1 HUVEC细胞的培养和处理 | 第14-15页 |
| 1.2.2 RNA样品制备 | 第15-16页 |
| 1.2.3 总RNA纯化 | 第16页 |
| 1.2.4 cDNA样品标记 | 第16-18页 |
| 1.2.5 标记/扩增的RNA的纯化 | 第18页 |
| 1.2.6 杂交 | 第18-19页 |
| 1.2.7 芯片洗涤 | 第19-21页 |
| 1.2.8 扫描 | 第21页 |
| 1.2.9 使用Aglient Feature Extraction Software提取数据 | 第21页 |
| 1.2.10 统计学处理 | 第21页 |
| 1.3 实验结果 | 第21-33页 |
| 1.3.1 用于基因芯片分析的RNA样品的抽提和质控 | 第21-22页 |
| 1.3.2 基因芯片检测实验组与对照组间差异表达的基因 | 第22-24页 |
| 1.3.3 实验组与对照组相比表达上调的基因 | 第24-26页 |
| 1.3.4 实验组与对照组相比表达下调的基因 | 第26-28页 |
| 1.3.5 实验组与对照组相比上调基因Go分析 | 第28-29页 |
| 1.3.6 实验组与对照组相比下调基因Go分析 | 第29-30页 |
| 1.3.7 实验组与对照组相比上调基因Pathway分析 | 第30页 |
| 1.3.8 实验组与对照组相比下调基因Pathway分析 | 第30-31页 |
| 1.3.9 实验组与对照组相比上调基因相互作用关系预测 | 第31-32页 |
| 1.3.10 实验组与对照组相比下调基因相互作用关系预测 | 第32页 |
| 1.3.11 差异LncRNA与相应mRNA联合分析 | 第32-33页 |
| 1.4 讨论 | 第33-36页 |
| 第二部分 HUVEC细胞氚水长期暴露后的毒性效应 | 第36-46页 |
| 2.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 2.1.1 主要试剂及耗材 | 第36-37页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第37页 |
| 2.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 2.2.1 细胞培养与氚水染毒 | 第37页 |
| 2.2.2 细胞增殖与毒性试验 | 第37-38页 |
| 2.2.3 细胞面积大小测量 | 第38页 |
| 2.2.4 细胞染毒剂量测定 | 第38页 |
| 2.2.5 细胞衰老实验 | 第38-39页 |
| 2.2.6 统计学处理 | 第39页 |
| 2.3 实验结果 | 第39-44页 |
| 2.3.1 氚水对HUVEC细胞形态的影响 | 第39-41页 |
| 2.3.2 氚水对HUVEC细胞大小的影响 | 第41-42页 |
| 2.3.3 氚水对HUVEC细胞增殖的影响 | 第42页 |
| 2.3.4 氚水对HUVEC细胞衰老的影响 | 第42-43页 |
| 2.3.5 氚水染毒所致细胞剂量计算 | 第43-44页 |
| 2.4 讨论 | 第44-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 综述 氚水的环境排放及生物学效应研究进展 | 第54-62页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 中英文对照缩略词 | 第62-63页 |
| 攻读硕士学位期间公开发表的论文 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
