| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 研究背景 | 第13-18页 |
| 1.1 前言 | 第13页 |
| 1.2 持留菌及其与疾病的关系 | 第13-14页 |
| 1.3 持留菌形成可能的机制 | 第14-15页 |
| 1.3.1 毒素/抗毒素(toxin/antitoxin,TA)系统 | 第14页 |
| 1.3.2 细胞代谢和能量产生的影响 | 第14-15页 |
| 1.3.3 生物被膜促进持留菌形成 | 第15页 |
| 1.3.4 氧化应激诱导 | 第15页 |
| 1.3.5 其他机制如化学信号机制、反式翻译机制等 | 第15页 |
| 1.4 金黄色葡萄球菌的主要毒力因素 | 第15-16页 |
| 1.5 代谢组学概述及主要应用 | 第16页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第16-18页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第18-32页 |
| 2.1 实验菌株 | 第18页 |
| 2.2 主要试剂和材料 | 第18-19页 |
| 2.3 主要仪器 | 第19页 |
| 2.4 主要实验方法 | 第19-30页 |
| 2.4.1 抗生素的配制 | 第19-20页 |
| 2.4.2 主要的培养基配制 | 第20页 |
| 2.4.3 主要试剂的配制 | 第20-21页 |
| 2.4.4 抗菌药物暴露下金黄色葡萄球菌野生株、突变株及回补株的生长比较 | 第21页 |
| 2.4.5 金黄色葡萄球菌野生株、突变株代谢组学样品准备 | 第21-22页 |
| 2.4.6 代谢组学样品预处理 | 第22页 |
| 2.4.7 质控样本（QC）的制备 | 第22页 |
| 2.4.8 色谱-质谱分析 | 第22-23页 |
| 2.4.9 金黄色葡萄球菌野生株、突变株及回补株总RNA的提取 | 第23-24页 |
| 2.4.10 实时荧光定量PCR检验金黄色葡萄球菌碳水化合物代谢通路基因表达变化 | 第24-28页 |
| 2.4.11 金黄色葡萄球菌野生株、突变株及回补株总蛋白的提取 | 第28-29页 |
| 2.4.12 金黄色葡萄球菌野生株、突变株及回补株乳酸脱氢酶(LDH)检测 | 第29页 |
| 2.4.13 实时荧光定量PCR检验金黄色葡萄球菌毒力相关基因表达变化 | 第29-30页 |
| 2.4.14 金黄色葡萄球菌野生株、突变株及回补株血浆凝固酶试验对比 | 第30页 |
| 2.5 数据处理分析 | 第30-32页 |
| 2.5.1 qPCR结果数据分析 | 第30-31页 |
| 2.5.2 细菌LDH浓度测定结果数据分析 | 第31-32页 |
| 第三章 结果 | 第32-95页 |
| 3.1 金黄色葡萄球菌野生株、突变株和回补株不同培养时间点对药物的敏感性 | 第32-33页 |
| 3.2 代谢组检测结果 | 第33-88页 |
| 3.2.1 实验质量控制 | 第33-35页 |
| 3.2.2 各组样本的代谢谱图 | 第35-39页 |
| 3.2.3 数据分析 | 第39-49页 |
| 3.2.4 显著差异代谢物 | 第49-61页 |
| 3.2.5 差异代谢物生物信息学分析 | 第61-88页 |
| 3.3 金黄色葡萄球菌总RNA提取后凝胶电泳结果 | 第88页 |
| 3.4 金黄色葡萄球菌野生株、突变株及回补株参与糖代谢主要基因表达水平qPCR检测结果 | 第88-92页 |
| 3.5 金黄色葡萄球菌野生株、突变株及回补株LDH检测结果 | 第92-93页 |
| 3.6 金黄色葡萄球菌野生株、突变株及回补株主要毒力基因表达水平qPCR检测结果 | 第93-94页 |
| 3.7 金黄色葡萄球菌野生株、突变株及回补株血浆凝固酶试验结果 | 第94-95页 |
| 第四章 讨论 | 第95-102页 |
| 4.1 NWMN_0037对金黄色葡萄球菌代谢的整体影响 | 第95-96页 |
| 4.2 NWMN_0037对金黄色葡萄球菌糖酵解/糖异生和TCA途径的影响 | 第96-98页 |
| 4.3 NWMN_0037对金黄色葡萄球菌甘油磷脂代谢的影响 | 第98-99页 |
| 4.4 NWMN_0037对金黄色葡萄球菌核苷酸代谢的影响 | 第99-100页 |
| 4.5 NWMN_0037对金黄色葡萄球菌毒力的调控 | 第100-102页 |
| 第五章 结论 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-109页 |
| 在学期间的研究成果 | 第109-110页 |
| 中英文对照缩略词表 | 第110-111页 |
| 致谢 | 第111页 |
