| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-25页 |
| 1 鱼类耐寒性研究进展 | 第13-14页 |
| 1.1 鱼类耐寒性能研究现状 | 第13页 |
| 1.2 低温对鱼类生理造成的影响 | 第13-14页 |
| 1.2.1 低温对血液指标的影响 | 第13-14页 |
| 1.2.2 低温对免疫相关酶的影响 | 第14页 |
| 2 耐寒相关基因研究进展 | 第14-16页 |
| 2.1 热休克蛋白70的研究进展 | 第14-16页 |
| 2.1.1 热休克蛋白的分类 | 第14-15页 |
| 2.1.2 热休克蛋白70的调控机制 | 第15页 |
| 2.1.3 热休克蛋白70的功能 | 第15-16页 |
| 2.2 SCD基因的研究进展 | 第16页 |
| 3 色素细胞 | 第16-17页 |
| 3.1 黑色素细胞 | 第16页 |
| 3.2 黑色素的合成 | 第16-17页 |
| 3.2.1 信号分子与传导通路和黑色素的形成 | 第17页 |
| 3.2.2 转录因子和黑色素的形成 | 第17页 |
| 4 黑色素合成通路基因 | 第17-21页 |
| 4.1 MC1R基因 | 第17-18页 |
| 4.2 ASIP基因 | 第18-19页 |
| 4.3 TYRP1基因 | 第19-20页 |
| 4.4 DCT基因 | 第20页 |
| 4.5 SOX10基因 | 第20-21页 |
| 4.6 SLC7A11基因 | 第21页 |
| 5 实时荧光定量PCR技术 | 第21-22页 |
| 5.1 荧光定量PCR技术的概念及测定方法 | 第21-22页 |
| 5.2 荧光定量PCR技术的优点及实际应用 | 第22页 |
| 6 本实验研究的目的、意义 | 第22-23页 |
| 7 研究内容 | 第23-25页 |
| 第二章 三个品系红罗非耐寒性实验 | 第25-37页 |
| 1 前言 | 第25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.2 实验仪器 | 第26页 |
| 2.3 实验设计 | 第26页 |
| 2.4 血清样品的制备 | 第26页 |
| 2.5 血清生化指标的测定 | 第26-27页 |
| 2.6 肝脏和鳃抗氧化酶的测定 | 第27页 |
| 2.7 组织RNA提取 | 第27页 |
| 2.8 RNA反转录反应 | 第27页 |
| 2.9 引物的设计合成 | 第27-28页 |
| 2.10 数据处理 | 第28页 |
| 3 结果 | 第28-32页 |
| 3.1 三个品系红罗非鱼不同温度下行为表现 | 第28页 |
| 3.2 血清生化指标的变化 | 第28-30页 |
| 3.2.1 以色列品系血清生化指标的变化 | 第28-29页 |
| 3.2.2 台湾品系血清生化指标的变化 | 第29页 |
| 3.2.3 马来西亚品系血清生化指标的变化 | 第29-30页 |
| 3.3 抗氧化酶的变化 | 第30-31页 |
| 3.4 抗寒基因的表达的差异 | 第31-32页 |
| 4 分析 | 第32-37页 |
| 4.1 血清生化指标 | 第32-34页 |
| 4.1.1 血糖 | 第32页 |
| 4.1.2 谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶 | 第32-33页 |
| 4.1.3 总蛋白、白蛋白、球蛋白 | 第33页 |
| 4.1.4 无机离子 | 第33-34页 |
| 4.2 抗氧化酶 | 第34-35页 |
| 4.2.1 SOD、MDA | 第34页 |
| 4.2.2 Na+-K+-ATPase | 第34-35页 |
| 4.3 抗寒基因 | 第35-37页 |
| 4.3.1 SCD基因 | 第35页 |
| 4.3.2 HSP70基因 | 第35-37页 |
| 第三章 以色列、台湾、马来西亚品系红罗非体色相关基因的表达分析 | 第37-53页 |
| 1 前言 | 第37页 |
| 2 材料与方法 | 第37-40页 |
| 2.1 实验材料 | 第37-38页 |
| 2.2 主要仪器 | 第38页 |
| 2.3 实验试剂 | 第38页 |
| 2.3.1 试剂盒 | 第38页 |
| 2.3.2 耗材 | 第38页 |
| 2.3.3 主要生物学软件 | 第38页 |
| 2.4 实验方法 | 第38-40页 |
| 2.4.1 组织RNA提取 | 第38页 |
| 2.4.2 RNA反转录反应 | 第38页 |
| 2.4.3 引物的设计合成 | 第38-39页 |
| 2.4.4 引物溶液的配制和稀释 | 第39页 |
| 2.4.5 各基因中间片段的扩增 | 第39页 |
| 2.4.6 DNA溶液的稀释 | 第39页 |
| 2.4.7 实时荧光定量分析 | 第39-40页 |
| 2.4.8 数据统计分析 | 第40页 |
| 3 实验结果 | 第40-47页 |
| 3.1 体色相关基因在马来西亚(粉白色)品系各组织分布差异 | 第40-43页 |
| 3.2 马来西亚品系不同体色间差异 | 第43-44页 |
| 3.3 体色相关基因在背部皮肤和腹部皮肤组织表达情况 | 第44-45页 |
| 3.4 体色相关基因在背腹部皮肤组织差异性表达 | 第45-47页 |
| 4 讨论 | 第47-53页 |
| 4.1 体色相关基因在马来西亚品系不同组织中的表达情况 | 第47-48页 |
| 4.2 体色相关基因在马来西亚品系三种体色中的表达情况 | 第48-50页 |
| 4.2.1 MC1R基因、ASIP基因、TYR家族基因三者间的互作关系 | 第48-50页 |
| 4.2.2 SOX10基因 | 第50页 |
| 4.2.3 SLC7A11基因 | 第50页 |
| 4.3 6个基因在三种不同品系中皮肤表达量 | 第50-51页 |
| 4.4 红罗非鱼三个品系不同部位皮肤表达 | 第51-53页 |
| 全文总结 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 科研情况 | 第61-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
