| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-27页 |
| 1. 甲壳动物蜕皮相关研究进展 | 第11-18页 |
| 1.1 甲壳动物蜕皮影响因素 | 第11-13页 |
| 1.2 甲壳动物蜕皮相关基因的研究 | 第13-18页 |
| 2. 甲壳动物生殖细胞及性腺发育研究进展 | 第18-25页 |
| 2.1 甲壳动物生殖生理水平调控研究进展 | 第19-20页 |
| 2.2 甲壳类动物生殖相关基因的研究现状 | 第20-25页 |
| 3. 本研究的目的意义 | 第25-27页 |
| 第二章 青虾蜕皮启动激素受体(ETHR)基因的克隆、时空表达分析及其功能研究 | 第27-49页 |
| 1. 前言 | 第27-28页 |
| 2. 实验材料 | 第28-29页 |
| 2.1 实验用虾 | 第28页 |
| 2.2 试剂 | 第28-29页 |
| 2.3 仪器 | 第29页 |
| 3. 实验方法 | 第29-37页 |
| 3.1 青虾RNA的提取与质量检测 | 第29页 |
| 3.2 青虾各组织RNA第一链cDNA的合成 | 第29-30页 |
| 3.3 青虾ETHR基因中间片段的获得及验证 | 第30-31页 |
| 3.4 PCR产物的克隆测序 | 第31-32页 |
| 3.5 RACE快速扩增实验 | 第32-33页 |
| 3.6 生物信息学分析 | 第33页 |
| 3.7 青虾ETHR基因时空表达分析 | 第33-35页 |
| 3.8 青虾ETHR基因功能的研究 | 第35-37页 |
| 4. 结果与分析 | 第37-45页 |
| 4.1 青虾ETHR基因全长cDNA序列结构特征 | 第37页 |
| 4.2 青虾ETHR氨基酸序列分析 | 第37-40页 |
| 4.3 ETHR基因在不同组织和胚胎发育表达模式 | 第40-42页 |
| 4.4 ETHR基因在蜕皮周期中的表达规律 | 第42-44页 |
| 4.5 ESA诱导ETHR的表达 | 第44页 |
| 4.6 利用dsRNA沉默ETHR后ETHR的表达模式 | 第44-45页 |
| 5. 讨论 | 第45-49页 |
| 第三章 青虾生殖母细胞特有因子1(Gtsf1)基因的克隆及其时空表达分析 | 第49-59页 |
| 1. 前言 | 第49页 |
| 2. 实验材料 | 第49-51页 |
| 2.1 实验用虾 | 第49-50页 |
| 2.2 试剂 | 第50页 |
| 2.3 仪器 | 第50-51页 |
| 3. 实验方法 | 第51-54页 |
| 3.1 青虾RNA的提取与质量检测 | 第51页 |
| 3.2 青虾脑RNA第一链cDNA的合成 | 第51页 |
| 3.3 青虾Gtsf1基因中间片段的获得及验证 | 第51-52页 |
| 3.4 PCR产物的克隆测序 | 第52页 |
| 3.5 青虾Gtsf1基因全序列的获得 | 第52-53页 |
| 3.6 生物信息学分析 | 第53页 |
| 3.7 青虾Gtsf1基因时空表达分析 | 第53-54页 |
| 4. 结果与分析 | 第54-57页 |
| 4.1 青虾Gtsf1基因序列特征 | 第54页 |
| 4.2 青虾Gtsf1基因系统进化分析 | 第54-55页 |
| 4.3 青虾Gtsf1基因的组织分布 | 第55-56页 |
| 4.4 不同卵巢发育时期Gtsf1基因的表达规律 | 第56-57页 |
| 4.5 青虾Gtsf1基因在胚胎和胚后发育过程中的表达规律 | 第57页 |
| 5. 讨论 | 第57-59页 |
| 全文结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-77页 |
| 附录 实验试剂及配置 | 第77-79页 |
| 致谢 | 第79-81页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文及专利 | 第81页 |
