| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-35页 |
| 1.1 甲醛污染的常见处理方法 | 第12-17页 |
| 1.1.1 日常室内甲醛去除法 | 第13-14页 |
| 1.1.2 物理处理法 | 第14页 |
| 1.1.3 化学去除方法 | 第14-15页 |
| 1.1.3.1 化学反应法 | 第14页 |
| 1.1.3.2 低浓度臭氧氧化法 | 第14页 |
| 1.1.3.3 光催化氧化法 | 第14-15页 |
| 1.1.4 生物降解法 | 第15-17页 |
| 1.2 甲醛生物降解反应器 | 第17-20页 |
| 1.2.1 生物填料塔 | 第17页 |
| 1.2.2 生物滤池 | 第17-18页 |
| 1.2.3 生物滴滤塔 | 第18-19页 |
| 1.2.4 生物洗涤器 | 第19-20页 |
| 1.3 固定化细胞技术 | 第20-22页 |
| 1.3.1 固定化细胞技术的优点 | 第20页 |
| 1.3.2 固定化方式的分类 | 第20-21页 |
| 1.3.3 固定化细胞技术的应用 | 第21-22页 |
| 1.4 微生物的甲醛代谢途径 | 第22-26页 |
| 1.4.1 同化途径 | 第22-24页 |
| 1.4.1.1 丝氨酸途径 | 第22-23页 |
| 1.4.1.2 RuMP途径 | 第23-24页 |
| 1.4.2 异化途径 | 第24-26页 |
| 1.4.2.1 四氢叶酸途径(THF) | 第24-25页 |
| 1.4.2.2 四氢甲烷蝶岭途径(H4MPT) | 第25页 |
| 1.4.2.3 谷胱甘肽途径(GSH/MySH) | 第25-26页 |
| 1.5 研究的意义和内容 | 第26-27页 |
| 参考文献 | 第27-35页 |
| 第二章 固定化Methylobacterium sp.XJLW降解甲醛及其细胞颗粒重复批次的研究 | 第35-49页 |
| 2.1 前言 | 第35-36页 |
| 2.2 实验材料 | 第36-38页 |
| 2.2.1 菌种 | 第36页 |
| 2.2.2 培养基及溶液 | 第36-37页 |
| 2.2.3 药品及试剂 | 第37-38页 |
| 2.2.4 实验仪器 | 第38页 |
| 2.3 实验方法 | 第38-40页 |
| 2.3.1 Methylobacterium sp.XJLW菌体OD-DCW标准曲线的绘制 | 第38页 |
| 2.3.2 样液中甲醛浓度的测定 | 第38-39页 |
| 2.3.3 菌体培养及获得 | 第39页 |
| 2.3.4 固定化细胞颗粒的制备 | 第39页 |
| 2.3.5 不同细胞浓度对固定化细胞降解甲醛及细胞颗粒重复批次的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.6 不同培养基对固定化细胞降解甲醛及细胞颗粒重复批次的影响 | 第40页 |
| 2.3.7 不同甲醛初始浓度对固定化细胞降解甲醛及细胞颗粒重复批次的影响 | 第40页 |
| 2.3.8 优化条件下固定化细胞颗粒重复批次的研究 | 第40页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第40-47页 |
| 2.4.1 Methylobacterium sp.XJLW菌体OD-DCW标准曲线 | 第40-41页 |
| 2.4.2 不同细胞浓度对固定化细胞降解甲醛及细胞颗粒重复批次的影响 | 第41-43页 |
| 2.4.4 不同培养基对固定化细胞降解甲醛及细胞颗粒重复批次的影响 | 第43-45页 |
| 2.4.5 不同甲醛初始浓度对固定化细胞降解甲醛及细胞颗粒重复批次的影响 | 第45-46页 |
| 2.4.6 优化条件下固定化细胞颗粒的重复批次研究 | 第46-47页 |
| 2.5 本章小结 | 第47页 |
| 参考文献 | 第47-49页 |
| 第三章 三相流化床生物反应器降解甲醛的研究 | 第49-58页 |
| 3.1 前言 | 第49-50页 |
| 3.2 实验材料 | 第50页 |
| 3.2.1 菌种 | 第50页 |
| 3.2.2 培养基及试剂 | 第50页 |
| 3.2.3 药品及试剂 | 第50页 |
| 3.2.4 实验仪器 | 第50页 |
| 3.3 实验方法 | 第50-53页 |
| 3.3.1 样液中甲醛浓度的测定 | 第50页 |
| 3.3.2 菌体培养及获得 | 第50页 |
| 3.3.3 固定化细胞颗粒的制备 | 第50页 |
| 3.3.4 甲醛生物反应器的构建 | 第50-51页 |
| 3.3.5 通气量对反应器中固定化细胞降解甲醛的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.6 反应温度对反应器中固定化细胞降解甲醛的影响 | 第52页 |
| 3.3.7 珠液比对反应器中固定化细胞降解甲醛的影响 | 第52页 |
| 3.3.8 最佳条件下固定化细胞在反应器中的重复批次 | 第52-53页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第53-56页 |
| 3.4.1 通气量对反应器中固定化细胞降解甲醛的影响 | 第53-54页 |
| 3.4.2 反应温度对反应器中固定化细胞降解甲醛的影响 | 第54-55页 |
| 3.4.3 珠液比对反应器中固定化细胞降解甲醛的影响 | 第55页 |
| 3.4.5 最佳条件下固定化细胞在反应器中的重复批次 | 第55-56页 |
| 3.5 本章小结 | 第56页 |
| 参考文献 | 第56-58页 |
| 第四章 甲酸脱氢酶重组质粒pMAL-c2X-fdh的构建 | 第58-84页 |
| 4.1 前言 | 第58-59页 |
| 4.2 实验材料 | 第59-64页 |
| 4.2.1 菌种与质粒 | 第59-60页 |
| 4.2.2 培养基和缓冲液 | 第60-62页 |
| 4.2.3 试剂及工具酶 | 第62-63页 |
| 4.2.4 仪器及设备 | 第63-64页 |
| 4.3 实验方法 | 第64-74页 |
| 4.3.1 甲酸脱氢酶基因fdh的获得 | 第64-69页 |
| 4.3.1.1 解脂耶罗维亚酵母Yarrowia lipolytica全基因提取 | 第64-65页 |
| 4.3.1.2 甲酸脱氢酶基因fdh的PCR扩增 | 第65-66页 |
| 4.3.1.3 电泳检测PCR产物 | 第66页 |
| 4.3.1.4 甲酸脱氢酶基因fdh的克隆 | 第66-67页 |
| 4.3.1.5 E. coli DH5α感受态的制备 | 第67-68页 |
| 4.3.1.6 目的基因fdh的转化 | 第68页 |
| 4.3.1.7 蓝白斑筛选阳性单菌落 | 第68页 |
| 4.3.1.8 菌落PCR验证及送样测序 | 第68-69页 |
| 4.3.2 重组表达质粒pMAL-c2X-fdh的构建 | 第69-71页 |
| 4.3.2.1 重组质粒pMD19-fdh的提取 | 第69页 |
| 4.3.2.2 pMD19-fdh和pMAL-c2X的双酶切 | 第69-70页 |
| 4.3.2.3 重组载体pMAL-c2X-fdh的构建 | 第70-71页 |
| 4.3.2.4 阳性克隆的筛选与验证 | 第71页 |
| 4.3.3 重组蛋白的诱导表达与分析 | 第71-73页 |
| 4.3.3.1 诱导表达 | 第71页 |
| 4.3.3.2 蛋白收集与预处理 | 第71-72页 |
| 4.3.3.3 表达产物的SDS-PAGE分析 | 第72-73页 |
| 4.3.4 重组菌Methylobacterium sp.XJLW/pMAL-c2X-fdh的构建 | 第73-74页 |
| 4.3.4.1 Methylobacterium sp.XJLW感受态的制备 | 第73页 |
| 4.3.4.2 重组质粒pMAL-c2X-fdh的转化 | 第73-74页 |
| 4.3.4.3 菌落PCR验证 | 第74页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第74-82页 |
| 4.4.1 基因组DNA的提取及PCR扩增 | 第74-75页 |
| 4.4.2 甲酸脱氢酶基因fdh的克隆 | 第75页 |
| 4.4.3 测序结果与序列分析 | 第75-77页 |
| 4.4.4 表达载体pMAL-c2X-fdh的构建 | 第77-78页 |
| 4.4.5 重组质粒PCR鉴定 | 第78-79页 |
| 4.4.6 重组质量的酶切鉴定 | 第79-80页 |
| 4.4.7 重组蛋白的SDS-PAGE检测 | 第80-81页 |
| 4.4.8 Methylobacterium sp.XJLW/pMAL-c2X-fdh的菌落PCR验证 | 第81-82页 |
| 4.5 本章小结 | 第82页 |
| 参考文献 | 第82-84页 |
| 第五章 总结与展望 | 第84-86页 |
| 5.1 总结 | 第84-85页 |
| 5.2 展望 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第87页 |
