| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 目录 | 第12-16页 |
| 插图索引 | 第16-19页 |
| 附表索引 | 第19-20页 |
| 第1章 绪论 | 第20-36页 |
| 1.1. 水体富营养化和微囊藻过度繁殖的成因 | 第20-22页 |
| 1.2. 铜绿微囊藻概述 | 第22-23页 |
| 1.3. 微囊藻毒素的危害 | 第23-26页 |
| 1.4. 藻类污染控制技术研究进展 | 第26-29页 |
| 1.4.1. 化学方法 | 第26-27页 |
| 1.4.2. 物理方法 | 第27-28页 |
| 1.4.3. 生物方法 | 第28-29页 |
| 1.5. 微囊藻毒素污染控制技术研究进展 | 第29-33页 |
| 1.5.1. 物理吸附 | 第29-30页 |
| 1.5.2. 生物降解 | 第30-31页 |
| 1.5.3. 化学氧化 | 第31-32页 |
| 1.5.4. 光催化氧化 | 第32-33页 |
| 1.5.5. 超声降解 | 第33页 |
| 1.6. 研究背景、内容和目的 | 第33-36页 |
| 1.6.1. 柠檬醛、柠檬烯和薄荷醇的结构与抑菌能力的研究 | 第33-35页 |
| 1.6.2. 研究目的 | 第35页 |
| 1.6.3. 研究内容 | 第35页 |
| 1.6.4. 技术路线 | 第35-36页 |
| 第2章 柠檬醛,柠檬烯和薄荷醇抑藻效应的研究 | 第36-57页 |
| 2.1. 引言 | 第36页 |
| 2.2. 材料与方法 | 第36-42页 |
| 2.2.1. 实验材料 | 第36-38页 |
| 2.2.2. 铜绿微囊藻的培养 | 第38-39页 |
| 2.2.3. 柠檬醛、柠檬烯和薄荷醇在水中的浓度的测定 | 第39-40页 |
| 2.2.4. 培养液pH值的测定 | 第40页 |
| 2.2.5. 细胞数量的测定 | 第40-41页 |
| 2.2.6. 细胞干重的测定 | 第41页 |
| 2.2.7. 细胞形态的检测 | 第41页 |
| 2.2.8. 数据的统计与分析 | 第41-42页 |
| 2.3. 实验结果 | 第42-54页 |
| 2.3.1. 柠檬醛、柠檬烯和薄荷醇在培养液中的浓度 | 第42页 |
| 2.3.2. 培养液pH值的变化 | 第42-46页 |
| 2.3.3. 铜绿微囊藻细胞数量的变化 | 第46-49页 |
| 2.3.4. 铜绿微囊藻细胞干重的变化 | 第49-53页 |
| 2.3.5. 铜绿微囊藻细胞形态的变化 | 第53-54页 |
| 2.4. 讨论 | 第54-56页 |
| 2.5. 本章小结 | 第56-57页 |
| 第3章 柠檬醛、柠檬烯和薄荷醇抑藻机理的研究 | 第57-119页 |
| 3.1. 引言 | 第57-59页 |
| 3.1.1. 光合作用色素的含量的变化 | 第57页 |
| 3.1.2. 铜绿微囊藻细胞的活力的变化 | 第57-58页 |
| 3.1.3. 铜绿微囊藻细胞抗氧化酶活性的变化 | 第58-59页 |
| 3.2. 材料与方法 | 第59-71页 |
| 3.2.1. 实验试剂与仪器 | 第59-60页 |
| 3.2.2. 叶绿素a含量的测定 | 第60-62页 |
| 3.2.3. PC和APC含量的测定 | 第62-63页 |
| 3.2.4. 可溶性蛋白质含量的测定 | 第63-64页 |
| 3.2.5. 细胞酯酶活性(EA)的测定 | 第64-65页 |
| 3.2.6. 细胞脱氢酶活性(DHA)的测定 | 第65-66页 |
| 3.2.7. 抗氧化酶活性的测定样本的选取 | 第66-67页 |
| 3.2.8. 超氧化物歧化酶活性的测定 | 第67页 |
| 3.2.9. 过氧化物酶活性的测定 | 第67-69页 |
| 3.2.10. 过氧化氢酶活性的测定 | 第69页 |
| 3.2.11. 丙二醛含量的测定 | 第69-70页 |
| 3.2.12. 数据的统计与分析 | 第70-71页 |
| 3.3. 实验结果 | 第71-100页 |
| 3.3.1. 叶绿素a的含量的变化 | 第71-75页 |
| 3.3.2. PC含量的变化 | 第75-79页 |
| 3.3.3. APC含量的变化 | 第79-83页 |
| 3.3.4. 细胞内蛋白质含量的变化 | 第83-87页 |
| 3.3.5. EA的变化 | 第87-90页 |
| 3.3.6. DHA的变化 | 第90-93页 |
| 3.3.7. 柠檬醛,柠檬烯和薄荷醇对抗氧化酶活性的影响 | 第93-96页 |
| 3.3.8. 细胞膜脂质过氧化程度的变化 | 第96-100页 |
| 3.4. 讨论 | 第100-118页 |
| 3.4.1. 光合作用色素含量的变化 | 第100-110页 |
| 3.4.2. 可溶性蛋白含量的变化 | 第110-114页 |
| 3.4.3. EA和DHA的变化 | 第114-115页 |
| 3.4.4. 抗氧化酶活性与细胞脂质过氧化程度的变化 | 第115-118页 |
| 3.5. 本章小结 | 第118-119页 |
| 第4章 细胞内外微囊藻毒素含量的变化 | 第119-136页 |
| 4.1. 引言 | 第119-120页 |
| 4.2. 材料和方法 | 第120-123页 |
| 4.2.1. 实验材料 | 第120-121页 |
| 4.2.2. 细胞内MCs的提取 | 第121页 |
| 4.2.3. 细胞外MCs的提取 | 第121-122页 |
| 4.2.4. MCs含量的测定方法 | 第122页 |
| 4.2.5. 数据的统计与分析 | 第122-123页 |
| 4.3. 实验结果 | 第123-129页 |
| 4.3.1. 对照组样本细胞内外MCs含量的变化 | 第123-124页 |
| 4.3.2. 在柠檬醛的胁迫下样本细胞内外MCs含量的变化 | 第124-126页 |
| 4.3.3. 在柠檬烯的胁迫下样本细胞内外MCs含量的变化 | 第126-127页 |
| 4.3.4. 在薄荷醇的胁迫下样本细胞内外MCs含量的变化 | 第127-129页 |
| 4.4. 讨论 | 第129-135页 |
| 4.5. 本章小结 | 第135-136页 |
| 结论 | 第136-138页 |
| 研究展望 | 第138-139页 |
| 参考文献 | 第139-175页 |
| 附录A 攻读博士学位期间所发表的学术论文目录 | 第175-177页 |
| 致谢 | 第177页 |
