| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 主要缩略词及其含义 | 第10-11页 |
| 1 绪论 | 第11-23页 |
| 1.1 二十二碳六烯酸（DHA）研究概况 | 第11-16页 |
| 1.1.1 DHA的结构与理化性质 | 第11页 |
| 1.1.2 DHA的生理功能 | 第11-13页 |
| 1.1.3 DHA的应用与市场 | 第13-14页 |
| 1.1.4 DHA的来源 | 第14-16页 |
| 1.2 裂殖壶菌概况及其发酵工艺条件优化研究 | 第16-19页 |
| 1.2.1 裂殖壶菌的概况 | 第16-17页 |
| 1.2.2 裂殖壶菌发酵工艺条件优化的研究 | 第17-19页 |
| 1.3 转酯化反应研究进展及展望 | 第19-20页 |
| 1.3.1 两步转酯化 | 第19-20页 |
| 1.3.2 胞内转酯化 | 第20页 |
| 1.4 选题意义与研究主要内容 | 第20-23页 |
| 1.4.1 选题意义 | 第20-22页 |
| 1.4.2 研究的主要内容 | 第22-23页 |
| 2 裂殖壶菌产DHA培养条件的优化 | 第23-37页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-26页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.1.2 实验仪器设备 | 第23-24页 |
| 2.1.3 试验方法 | 第24-26页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第26-36页 |
| 2.2.1 DHA-ME的气相色谱分析 | 第26-27页 |
| 2.2.2 裂殖壶菌的生长特性 | 第27页 |
| 2.2.3 碳源对菌株生物量、总脂及DHA含量的影响 | 第27-29页 |
| 2.2.4 氮源对菌株生物量、总脂及DHA含量的影响 | 第29-32页 |
| 2.2.5 温度对菌株生物量、总脂及DHA含量的影响 | 第32-33页 |
| 2.2.6 碳氮源正交优化实验 | 第33-36页 |
| 2.3 本章小结 | 第36-37页 |
| 3 裂殖壶菌湿菌体酒精脱水干燥的研究 | 第37-41页 |
| 3.1 材料与方法 | 第37-38页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第37页 |
| 3.1.2 实验仪器设备 | 第37-38页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第38页 |
| 3.2 实验结果 | 第38-40页 |
| 3.2.1 95%酒精和无水酒精结合脱水干燥 | 第38-39页 |
| 3.2.2 无水酒精脱水干燥 | 第39页 |
| 3.2.3 酒精脱水干燥与传统烘干的菌体提取油脂外观比较 | 第39-40页 |
| 3.3 分析与讨论 | 第40页 |
| 3.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 4 裂殖壶菌胞内乙酯化的研究 | 第41-54页 |
| 4.1 材料与方法 | 第41-44页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第41-42页 |
| 4.1.2 实验仪器设备 | 第42页 |
| 4.1.3 试验方法 | 第42-44页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第44-52页 |
| 4.2.1 DHA的气相色谱分析 | 第44页 |
| 4.2.2 乙酯化条件单因素实验结果 | 第44-47页 |
| 4.2.3 Box-Behnken试验设计结果与讨论 | 第47-52页 |
| 4.3 本章小结 | 第52-54页 |
| 5 结论与展望 | 第54-56页 |
| 5.1 结论 | 第54页 |
| 5.2 本文创新之处 | 第54页 |
| 5.3 展望 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 作者简介 | 第65-66页 |
| 导师简介 | 第66页 |
