摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第一章 绪论 | 第11-27页 |
1.1 黄秋葵多糖的研究进展 | 第11-15页 |
1.1.1 黄秋葵多糖的结构研究 | 第11-12页 |
1.1.2 黄秋葵多糖的生物活性 | 第12-15页 |
1.2 多糖的结构修饰 | 第15-21页 |
1.2.1 多糖的羧甲基化 | 第15-16页 |
1.2.2 多糖的硫酸酯化 | 第16页 |
1.2.3 多糖的乙酰化 | 第16-17页 |
1.2.4 多糖的磷酸化 | 第17-18页 |
1.2.5 多糖的磺酰化 | 第18页 |
1.2.6 多糖的降解修饰 | 第18-19页 |
1.2.7 多糖及其修饰物的结构解析 | 第19-21页 |
1.3 短链脂肪酸(Short chain fatty acids, SCFAs) | 第21-25页 |
1.3.1 短链脂肪酸的分类 | 第21-22页 |
1.3.2 生物样品中SCFAs分析的预处理方法 | 第22页 |
1.3.3 短链脂肪酸的分析方法 | 第22-24页 |
1.3.4 短链脂肪酸的生理活性 | 第24-25页 |
1.4 本文研究的目的和意义 | 第25页 |
1.5 研究内容 | 第25-27页 |
第二章 黄秋葵花多糖的结构修饰及初步表征 | 第27-47页 |
2.1 材料与方法 | 第27-28页 |
2.1.1 仪器 | 第27页 |
2.1.2 材料与试剂 | 第27-28页 |
2.2 实验方法 | 第28-32页 |
2.2.1 羧甲基化黄秋葵花多糖的制备 | 第28页 |
2.2.2 羧甲基取代度测定 | 第28-29页 |
2.2.3 硫酸酯化黄秋葵花多糖的制备 | 第29页 |
2.2.4 硫酸酯化取代度含量测定 | 第29-30页 |
2.2.5 乙酰化黄秋葵花多糖的制备 | 第30页 |
2.2.6 乙酰基取代度的测定 | 第30页 |
2.2.7 结构修饰多糖的初步表征 | 第30-32页 |
2.3 结果与讨论 | 第32-45页 |
2.3.1 黄秋葵花多糖羧甲基化修饰 | 第32页 |
2.3.2 黄秋葵花多糖硫酸酯化修饰 | 第32页 |
2.3.3 黄秋葵花多糖乙酰化修饰 | 第32页 |
2.3.4 结构修饰多糖的初步表征 | 第32-45页 |
2.4 本章小结 | 第45-47页 |
第三章 发酵液中SCFAs分析方法的建立及验证 | 第47-59页 |
3.1 仪器、材料与试剂 | 第47页 |
3.1.1 仪器 | 第47页 |
3.1.2 材料与试剂 | 第47页 |
3.2 实验方法 | 第47-49页 |
3.2.1 气相色谱条件 | 第47-48页 |
3.2.2 萃取溶剂对发酵液中SCFAs测定的影响 | 第48页 |
3.2.3 酸度对发酵液中SCFAs测定的影响 | 第48页 |
3.2.4 标准曲线的测定 | 第48页 |
3.2.5 方法学验证 | 第48-49页 |
3.3 结果与讨论 | 第49-58页 |
3.3.1 萃取溶剂对发酵液中SCFAs测定的影响 | 第49-50页 |
3.3.2 酸度对发酵液中SCFAs测定的影响 | 第50-51页 |
3.3.3 方法学验证 | 第51-58页 |
3.4 本章小结 | 第58-59页 |
第四章 黄秋葵花多糖及修饰多糖对大肠杆菌发酵液中SCFAs的影响 | 第59-73页 |
4.1 材料与方法 | 第59-60页 |
4.1.1 培养基 | 第59页 |
4.1.2 仪器和设备 | 第59-60页 |
4.1.3 材料与试剂 | 第60页 |
4.2 实验方法 | 第60-61页 |
4.2.1 E.Coli BL21的培养 | 第60页 |
4.2.2 多糖的发酵培养 | 第60页 |
4.2.3 SCFAs的分析 | 第60-61页 |
4.3 结果与讨论 | 第61-71页 |
4.3.1 黄秋葵花多糖对E.Coli BL21发酵液中的SCFAs的影响 | 第61-64页 |
4.3.2 羧甲基化黄秋葵花多糖对E.Coli BL21发酵液中的SCFAs的影响 | 第64-66页 |
4.3.3 硫酸酯化黄秋葵花多糖对E.Coli BL21发酵液中的SCFAs的影响 | 第66-69页 |
4.3.4 乙酰化黄秋葵花多糖对E.Coli BL21发酵液中的SCFAs的影响 | 第69-71页 |
4.4 本章小结 | 第71-73页 |
第五章 结论与展望 | 第73-75页 |
5.1 主要结论 | 第73-74页 |
5.2 展望 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-83页 |
致谢 | 第83-84页 |
攻读硕士学位期间发表的论文目录 | 第84页 |