| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 主要符号对照表 | 第10-12页 |
| 第1章 前言 | 第12-24页 |
| 1.1 脱落酸（ABA）信号转导通路研究进展 | 第12-15页 |
| 1.1.1 ABA受体研究进展 | 第12-13页 |
| 1.1.2 ABA对基因表达的调控 | 第13-15页 |
| 1.2 ABA参与调控植物生长发育 | 第15-16页 |
| 1.3 ABA参与调控植物抗逆反应 | 第16-18页 |
| 1.4 PPR蛋白研究进展 | 第18-22页 |
| 1.4.1 PPR蛋白结构特征 | 第18-19页 |
| 1.4.2 PPR蛋白对植物生长发育的调控及其作用机制 | 第19-20页 |
| 1.4.3 PPR蛋白参与调控ABA信号转导与抗逆反应 | 第20-22页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第22-24页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第24-55页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-32页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第24页 |
| 2.1.2 菌株和载体 | 第24页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第24-25页 |
| 2.1.4 主要化学试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.5 常用抗生素 | 第26-27页 |
| 2.1.6 常用培养基 | 第27-28页 |
| 2.1.7 常用溶液 | 第28-32页 |
| 2.2 实验方法 | 第32-47页 |
| 2.2.1 载体构建 | 第32-35页 |
| 2.2.2 常用蛋白质检测技术 | 第35-36页 |
| 2.2.3 拟南芥叶片基因组DNA快速提取 | 第36-37页 |
| 2.2.4 拟南芥T-DNA插入突变体鉴定与插入位点分析 | 第37页 |
| 2.2.5 拟南芥转基因植株获得 | 第37-39页 |
| 2.2.6 植物RNA提取、纯化与反转录 | 第39-41页 |
| 2.2.7 实时荧光定量PCR（Real-Time PCR） | 第41页 |
| 2.2.8 拟南芥RNA免疫共沉淀（ RIP） | 第41-42页 |
| 2.2.9 植物內源ABA含量测定 | 第42-43页 |
| 2.2.10 拟南芥的培养 | 第43页 |
| 2.2.11 萌发实验 | 第43页 |
| 2.2.12 幼苗生长实验 | 第43页 |
| 2.2.13 ABA影响的气孔运动实验 | 第43-44页 |
| 2.2.14 离体叶片失水实验 | 第44页 |
| 2.2.15 干旱实验 | 第44页 |
| 2.2.16 Na Cl浇灌幼苗实验 | 第44页 |
| 2.2.17 高浓度Na Cl耐受性检测 | 第44页 |
| 2.2.18 冻害处理实验 | 第44-45页 |
| 2.2.19 相关植物生理学类实验方法 | 第45-46页 |
| 2.2.20 逆境基因诱导表达实验 | 第46页 |
| 2.2.21 GUS组织化学染色 | 第46页 |
| 2.2.22 亚细胞定位检测 | 第46页 |
| 2.2.23 早花指标检测 | 第46-47页 |
| 2.2.24 拟南芥原生质体制备 | 第47页 |
| 2.3 实验中用到的引物 | 第47-55页 |
| 2.3.1 T-DNA插入突变体鉴定引物 | 第47-48页 |
| 2.3.2 构建SOAR1过表达载体引物 | 第48页 |
| 2.3.3 SOAR1启动子克隆引物 | 第48-49页 |
| 2.3.4 RNA免疫共沉淀（ RIP）检测引物 | 第49-50页 |
| 2.3.5 半定量PCR引物 | 第50页 |
| 2.3.6 实时荧光定量PCR实验引物 | 第50-55页 |
| 第3章 SOAR1蛋白序列分析与亚细胞定位 | 第55-65页 |
| 3.1 SOAR1基因克隆 | 第55-56页 |
| 3.2 SOAR1蛋白结构特征与序列分析 | 第56-59页 |
| 3.2.1 SOAR1蛋白结构特征 | 第56-57页 |
| 3.2.2 拟南芥SOAR1与其他植物中同源蛋白序列的比对 | 第57-59页 |
| 3.3 SOAR1相关遗传材料准备 | 第59-62页 |
| 3.3.1 SOAR1 T-DNA插入突变体的鉴定与分析 | 第59-61页 |
| 3.3.2 SOAR1过表达转基因植株筛选与分析 | 第61页 |
| 3.3.3 不同基因型材料中SOAR1表达检测 | 第61-62页 |
| 3.3.4 突变体soar1-2 和soar1-3 转基因恢复系植株的筛选 | 第62页 |
| 3.4 SOAR1蛋白在细胞质 -细胞核双定位 | 第62-64页 |
| 3.5 小结 | 第64-65页 |
| 第4章 SOAR1是ABA信号转导的关键调节子 | 第65-81页 |
| 4.1 SOAR1调控种子萌发对ABA的响应 | 第65-66页 |
| 4.2 SOAR1调控幼苗生长对ABA的响应 | 第66-70页 |
| 4.3 利用SOAR1过表达植物对ABA的高耐受性进行除草的可行性 | 第70-74页 |
| 4.3.1 在种子萌发期ABA除草浓度的选择区间 | 第71-72页 |
| 4.3.2 在幼苗早期生长期ABA除草浓度的选择区间 | 第72-74页 |
| 4.4 SOAR1表达变化影响ABA信号转导调节基因表达 | 第74-77页 |
| 4.5 SOAR1对拟南芥种子中內源ABA含量的影响 | 第77-80页 |
| 4.6 小结 | 第80-81页 |
| 第5章 SOAR1调控植物生长发育 | 第81-91页 |
| 5.1 SOAR1表达模式分析 | 第81-83页 |
| 5.2 SOAR1调控种子萌发速率 | 第83-84页 |
| 5.3 SOAR1调控幼苗下胚轴生长 | 第84-86页 |
| 5.4 SOAR1调控成花转换 | 第86-90页 |
| 5.5 小结 | 第90-91页 |
| 第6章 SOAR1调控植物对非生物胁迫的抗逆反应 | 第91-106页 |
| 6.1 SOAR1调控植物对干旱胁迫的耐受性 | 第91-93页 |
| 6.2 SOAR1影响植物对渗透胁迫与盐胁迫的耐受性 | 第93-98页 |
| 6.2.1 SOAR1影响种子萌发对渗透胁迫与盐胁迫的响应 | 第93-94页 |
| 6.2.2 SOAR1影响幼苗生长对盐胁迫耐受性 | 第94-96页 |
| 6.2.3 SOAR1过表达植物种子萌发对高浓度Na Cl处理的耐受极限 | 第96-97页 |
| 6.2.4 SOAR1调控成熟植株对盐胁迫的耐受性 | 第97-98页 |
| 6.3 SOAR1调控植物对低温胁迫的响应 | 第98-100页 |
| 6.4 SOAR1表达变化影响盐、渗透与冷胁迫响应基因表达 | 第100-105页 |
| 6.5 小结 | 第105-106页 |
| 第7章 SOAR1的RNA结合功能分析 | 第106-111页 |
| 7.1 SOAR1潜在RNA结合位点预测 | 第106-107页 |
| 7.2 SOAR1在体内结合ABI5 m RNA | 第107-109页 |
| 7.3 SOAR1在遗传学上作用于ABAR下游而作用于ABI5上游 | 第109-110页 |
| 7.4 小结 | 第110-111页 |
| 第8章 讨论与展望 | 第111-118页 |
| 8.1 SOAR1是ABA信号转导核心枢纽 | 第111-112页 |
| 8.2 ABA作为SOAR1过表达转基因植物选择性除草剂的建议方案 | 第112-113页 |
| 8.3 SOAR1调控植物生长发育与成花转换的机制分析 | 第113-115页 |
| 8.4 SOAR1调控植物对多种非生物胁迫耐受性的机制分析 | 第115-116页 |
| 8.5 展望 | 第116-118页 |
| 参考文献 | 第118-132页 |
| 致谢 | 第132-134页 |
| 附录A SOAR1基因序列 | 第134-136页 |
| 附录B SOAR1启动子区预测序列 | 第136-138页 |
| 附录C SOAR1蛋白结构预测模型 | 第138-140页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第140-141页 |
