| 摘要 | 第2-4页 |
| Summary | 第4-5页 |
| 缩略词 | 第6-10页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-22页 |
| 1.1 不定根研究进展 | 第11-12页 |
| 1.1.1 不定根的形成 | 第11页 |
| 1.1.2 不定根发生的调控 | 第11-12页 |
| 1.2 氢气生物学效应研究进展 | 第12-14页 |
| 1.2.1 生物体内氢气的来源 | 第12-13页 |
| 1.2.2 氢气的生物学效应 | 第13-14页 |
| 1.3 乙烯生物学效应研究进展 | 第14-17页 |
| 1.3.1 乙烯在植物体内的产生 | 第14-15页 |
| 1.3.2 乙烯的生物学功能 | 第15-16页 |
| 1.3.3 乙烯信号转导机制 | 第16-17页 |
| 1.4 蛋白质组学及其研究进展 | 第17-20页 |
| 1.4.1 蛋白质组学研究内容 | 第18页 |
| 1.4.2 蛋白组学研究技术 | 第18-19页 |
| 1.4.3 植物蛋白组学的研究及发展现状 | 第19-20页 |
| 1.4.4 黄瓜蛋白质组学研究现状 | 第20页 |
| 1.5 本论文研究内容及其目的和意义 | 第20-21页 |
| 1.6 技术路线图 | 第21-22页 |
| 第二章 氢气和乙烯在不定根发生过程中的作用及其关系 | 第22-31页 |
| 2.1 材料和方法 | 第22-23页 |
| 2.1.1 植物材料的培养 | 第22页 |
| 2.1.2 富氢水的制备 | 第22页 |
| 2.1.3 植物生根指标的测定 | 第22-23页 |
| 2.2 结果与分析 | 第23-29页 |
| 2.2.1 不同浓度的H2对黄瓜不定根形成的影响 | 第23-24页 |
| 2.2.2 不用浓度的乙烯对黄瓜不定根形成的影响 | 第24-25页 |
| 2.2.3 不同浓度的AVG、AgNO3和NaNO3对黄瓜不定根形成的影响 | 第25-28页 |
| 2.2.4 乙烯抑制剂对在H2诱导黄瓜不定根形成中的影响 | 第28-29页 |
| 2.3 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 黄瓜外植体全蛋白双向电泳体系的建立 | 第31-42页 |
| 3.1 材料和方法 | 第31-37页 |
| 3.1.1 植物材料的准备 | 第31页 |
| 3.1.2 设备与仪器 | 第31页 |
| 3.1.3 试验方法 | 第31-37页 |
| 3.2 结果与分析 | 第37-39页 |
| 3.2.1 不同PH的IPG胶条对双向电泳结果的影响 | 第37-38页 |
| 3.2.2 不同蛋白上样量对双向电泳结果的影响 | 第38页 |
| 3.2.3 不同分离胶浓度的双向电泳结果的影响 | 第38-39页 |
| 3.3 讨论 | 第39-42页 |
| 第四章 不同处理的黄瓜外植体蛋白的双向电泳分析 | 第42-54页 |
| 4.1 材料和方法 | 第42-43页 |
| 4.1.1 植物材料的准备 | 第42页 |
| 4.1.2 试验方法 | 第42-43页 |
| 4.2 结果与分析 | 第43-50页 |
| 4.2.1 双向电泳图谱分析 | 第43-44页 |
| 4.2.2 差异蛋白质谱分析 | 第44-48页 |
| 4.2.3 差异表达蛋白GO分析 | 第48-49页 |
| 4.2.4 差异表达蛋白功能分类 | 第49-50页 |
| 4.2.5 H_2、乙烯和AVG诱导不定根发生中的差异表达蛋白分析 | 第50页 |
| 4.3 讨论 | 第50-54页 |
| 4.3.1 光合作用相关蛋白及能量代谢相关蛋白 | 第51页 |
| 4.3.2 转录和翻译相关蛋白及蛋白折叠、修饰与降解相关蛋白 | 第51-52页 |
| 4.3.3 防御相关蛋白及细胞结构相关蛋白 | 第52页 |
| 4.3.4 氨基酸代谢相关蛋白 | 第52-53页 |
| 4.3.5 其他代谢相关蛋白 | 第53-54页 |
| 第五章 全文结论与创新点 | 第54-55页 |
| 5.1 全文结论 | 第54页 |
| 5.2 创新点 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 作者简介 | 第64-65页 |
| 导师简介 | 第65-66页 |
