中文摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
英文缩写对照表 | 第12-14页 |
第一部分 文献综述 | 第14-24页 |
1 子痫前期 | 第14-16页 |
1.1 临床上子痫前期诊断标准 | 第14页 |
1.2 目前子痫前期可能发病机制 | 第14-16页 |
2 蜕膜化 | 第16-21页 |
2.1 蜕膜的分子调控机制 | 第17-20页 |
2.2 蜕膜的作用 | 第20-21页 |
3 SP1和P300 | 第21-22页 |
4 本实验研究思路和意义 | 第22-24页 |
4.1 研究背景 | 第22页 |
4.2 研究内容 | 第22-23页 |
4.3 研究思路 | 第23页 |
4.4 研究意义 | 第23-24页 |
第二部分 | 第24-62页 |
第一章 实验组与对照组产妇临床信息分析 | 第24-26页 |
1 蜕膜组织标本的获取及预处理 | 第24页 |
1.1 组织获取 | 第24页 |
1.2 分装组织 | 第24页 |
2 研究对象的临床信息分析及分组 | 第24-25页 |
3 结果 | 第25页 |
4 讨论 | 第25-26页 |
第二章 SP1和P300在蜕膜中的表达与定位 | 第26-31页 |
1 实验材料和方法 | 第26-29页 |
1.1 实验仪器和试剂 | 第26-27页 |
1.2 冷冻切片和免疫组化步骤 | 第27-29页 |
2 实验结果 | 第29-30页 |
3 讨论 | 第30-31页 |
第三章 SPE、NP中SP1和P300在mRNA及蛋白水平的表达差异 | 第31-40页 |
1 实验材料和方法 | 第31-37页 |
1.1 实验仪器和耗材试剂 | 第31-33页 |
1.2 组织中总RNA提取 | 第33-35页 |
1.3 总蛋白提取以及Western Blot | 第35-37页 |
2 实验结果 | 第37-39页 |
2.1 Real-Time PCR结果 | 第37-38页 |
2.2 Western Blot结果 | 第38-39页 |
3 讨论 | 第39-40页 |
第四章 体外诱导蜕膜化模型的建立以及SP1和P300的表达变化 | 第40-50页 |
1 实验材料和方法 | 第40-45页 |
1.1 实验仪器和耗材试剂 | 第40-41页 |
1.2 细胞系体外诱导蜕膜化模型 | 第41-43页 |
1.3 hESCs RNA的提取与浓度测定 | 第43-44页 |
1.4 细胞系的蛋白提取以及Western Blot | 第44-45页 |
2 实验结果 | 第45-48页 |
2.1 体外诱导蜕膜化的细胞形态 | 第45-47页 |
2.2 SP1和P300 mRNA水平在诱导蜕膜化后的变化情况 | 第47-48页 |
2.3 SP1和P300蛋白水平在诱导蜕膜化后的变化情况 | 第48页 |
3 讨论 | 第48-50页 |
第五章 干扰SP1以及P300后对蜕膜化的作用 | 第50-54页 |
1 实验材料和方法 | 第50-51页 |
1.1 实验仪器和耗材试剂 | 第50页 |
1.2 细胞培养 | 第50页 |
1.3 细胞转染 | 第50页 |
1.4 细胞中RNA提取以及浓度质量测定 | 第50-51页 |
1.5 快速逆转录 | 第51页 |
1.6 Real-Time PCR | 第51页 |
2 实验结果 | 第51-52页 |
2.1 干扰SP1以及P300后蜕膜化中PRL和IGFBP1的变化情况 | 第51-52页 |
2.1 干扰SP1以及P300后蜕膜化中VEGF的变化情况 | 第52页 |
3 讨论 | 第52-54页 |
第六章 原代子宫内膜基质细胞诱导蜕膜化及干扰实验 | 第54-62页 |
1 实验材料与方法 | 第54-57页 |
1.1 实验仪器和耗材试剂 | 第54页 |
1.2 原代子宫内膜基质细胞的提取 | 第54-57页 |
2 实验结果 | 第57-60页 |
2.1 原代子宫内膜基质细胞纯度鉴定 | 第57页 |
2.2 原代子宫内膜基质细胞诱导蜕膜化的细胞形态 | 第57-58页 |
2.3 SP1和P300在原代子宫内膜基质细胞中的表达变化 | 第58-60页 |
2.4 在原代细胞中干扰SP1和P300后对蜕膜化的影响 | 第60页 |
3 讨论 | 第60-62页 |
讨论与总结 | 第62-64页 |
参考文献 | 第64-69页 |
致谢 | 第69-71页 |
硕士期间发表的论文 | 第71页 |