| 摘要 | 第5-6页 |
| Abrtract | 第6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-32页 |
| 1.1 糖尿病 | 第10-17页 |
| 1.1.1 糖尿病的主要类型 | 第10-11页 |
| 1.1.2 2型糖尿病的影响因素 | 第11-13页 |
| 1.1.3 2型糖尿病发病的机制 | 第13-15页 |
| 1.1.4 糖尿病的治疗现状 | 第15-17页 |
| 1.2 天然产物降血糖成分 | 第17-20页 |
| 1.2.1 皂苷类 | 第17-18页 |
| 1.2.2 多糖 | 第18页 |
| 1.2.3 黄酮类 | 第18-19页 |
| 1.2.4 萜类 | 第19页 |
| 1.2.5 生物碱 | 第19页 |
| 1.2.6 硫键化合物 | 第19页 |
| 1.2.7 不饱和脂肪酸 | 第19-20页 |
| 1.2.8 蛋白质和氨基酸 | 第20页 |
| 1.3 α-葡萄糖苷酶抑制剂的研究概况 | 第20-23页 |
| 1.3.1 α-葡萄糖苷酶抑制剂及其类型 | 第20-21页 |
| 1.3.2 α-葡萄糖苷酶抑制剂的临床应用 | 第21页 |
| 1.3.3 α-葡萄糖苷酶抑制剂的作用原理 | 第21-22页 |
| 1.3.4 α-葡萄糖苷酶抑制剂的来源和制备 | 第22-23页 |
| 1.4 紫苏 | 第23-29页 |
| 1.4.1 概述 | 第23-24页 |
| 1.4.2 营养成分 | 第24-25页 |
| 1.4.3 功能成分 | 第25-27页 |
| 1.4.4 保健功能 | 第27-29页 |
| 1.5 研究背景和意义 | 第29-30页 |
| 1.6 研究内容 | 第30-32页 |
| 第二章 响应面法优化紫苏叶降血糖活性成分的提取工艺研究 | 第32-46页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第32-33页 |
| 2.1.1 材料和试剂 | 第32页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第32-33页 |
| 2.2 试剂的制备 | 第33页 |
| 2.2.1 紫苏叶样品的制备 | 第33页 |
| 2.2.2 磷酸钾缓冲溶液(1M/L,pH7.0) | 第33页 |
| 2.2.3 PNPG溶液的配制 | 第33页 |
| 2.2.4 猪胰肠来源的α-葡萄糖苷酶的制备 | 第33页 |
| 2.3 实验方法 | 第33-36页 |
| 2.3.1 抑制α-葡萄糖苷酶活性测定方法 | 第33-35页 |
| 2.3.2 紫苏叶的提取工艺 | 第35页 |
| 2.3.3 单因素实验 | 第35-36页 |
| 2.3.4 提取响应曲面法试验 | 第36页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第36-45页 |
| 2.4.1 单因素实验结果 | 第36-39页 |
| 2.4.2 热水提取紫苏叶中降血糖活性物质的响应面实验 | 第39-45页 |
| 2.4.3 验证试验 | 第45页 |
| 2.5 小结 | 第45-46页 |
| 第三章 紫苏叶提取物对不同来源的葡萄糖苷酶的影响 | 第46-61页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第47页 |
| 3.1.1 材料和试剂 | 第47页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第47页 |
| 3.2 试剂的制备 | 第47-49页 |
| 3.2.1 紫苏叶提取物粉末的制备 | 第47页 |
| 3.2.2 紫苏叶提取物溶液的制备 | 第47-48页 |
| 3.2.3 阿卡波糖溶液配制 | 第48页 |
| 3.2.4 磷酸钾缓冲溶液(1M,pH7.0) | 第48页 |
| 3.2.5 PNPG溶液的配制 | 第48页 |
| 3.2.6 猪胰肠来源的α-葡萄糖苷酶的制备 | 第48页 |
| 3.2.7 大米来源的α-葡萄糖苷酶的制备 | 第48页 |
| 3.2.8 酵母来源的α-葡萄糖苷酶的制备 | 第48页 |
| 3.2.9 嗜热芽孢杆菌来源的α-葡萄糖苷酶的制备 | 第48-49页 |
| 3.3 紫苏叶提取物对不同来源的α-葡糖苷酶的作用研究 | 第49-50页 |
| 3.3.1 对猪胰腺来源的α-葡萄糖苷酶抑制作用 | 第49页 |
| 3.3.2 对大米来源的α-葡萄糖苷酶抑制作用 | 第49页 |
| 3.3.3 对酵母来源的α-葡萄糖苷酶抑制作用 | 第49-50页 |
| 3.3.4 对细菌来源的α-葡萄糖苷酶抑制作用 | 第50页 |
| 3.4 紫苏叶提取物对不同来源的α-葡萄糖苷酶的抑制动力学实验 | 第50-52页 |
| 3.4.1 对猪胰肠来源的α-葡萄糖苷酶的抑制动力学实验 | 第50-51页 |
| 3.4.2 对大米来源的α-葡萄糖苷酶的抑制动力学实验 | 第51页 |
| 3.4.3 对酵母来源的α-葡萄糖苷酶的抑制动力学实验 | 第51页 |
| 3.4.4 对细菌来源的α-葡萄糖苷酶的抑制动力学实验 | 第51-52页 |
| 3.5 数据处理 | 第52页 |
| 3.6 结果与讨论 | 第52-59页 |
| 3.6.1 紫苏叶提取物及阿卡波糖对不同来源的α-葡萄糖苷酶的抑制作用 | 第52-55页 |
| 3.6.2 紫苏叶提取物抑制不同来源的α-葡萄糖苷酶的IC_(50)值 | 第55-56页 |
| 3.6.3 紫苏叶提取物对不同来源的α-葡萄糖苷酶的抑制动力学实验 | 第56-59页 |
| 3.7 小结 | 第59-61页 |
| 第四章 紫苏叶提取物对Caco-2细胞跨膜转运的影响 | 第61-78页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第62页 |
| 4.1.1 实验细胞株 | 第62页 |
| 4.1.2 药品与试剂 | 第62页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第62页 |
| 4.2 实验试剂的配制 | 第62-64页 |
| 4.3 实验方法 | 第64-70页 |
| 4.3.1 Caco-2细胞的复苏 | 第64页 |
| 4.3.2 Caco-2细胞的常规维持培养 | 第64页 |
| 4.3.3 Caco-2细胞的传代 | 第64-65页 |
| 4.3.4 Caco-2细胞的冻存 | 第65页 |
| 4.3.5 Caco-2细胞的单层模型的建立 | 第65-66页 |
| 4.3.6 Caco-2细胞的单层模型的完整性评价 | 第66-67页 |
| 4.3.7 MTT法评价药物对Caco-2细胞的细胞毒性 | 第67-68页 |
| 4.3.8 葡萄糖氧酶法测定葡萄糖含量 | 第68页 |
| 4.3.9 紫苏叶提取物对Caco-2细胞上蔗糖酶和麦芽糖酶活力的影响 | 第68-69页 |
| 4.3.10 紫苏叶提取物对葡萄糖在Caco-2细胞中转运的影响 | 第69-70页 |
| 4.4 数据处理及分析 | 第70页 |
| 4.5 结果与分析 | 第70-76页 |
| 4.5.1 Caco-2细胞单层完整性评价 | 第70-71页 |
| 4.5.2 细胞毒性试验 | 第71-72页 |
| 4.5.3 紫苏叶提取物对Caco-2细胞的双糖酶的酶活力影响 | 第72-74页 |
| 4.5.4 紫苏叶对葡萄糖在Caco-2细胞中跨膜转运的影响 | 第74-76页 |
| 4.6 小结 | 第76-78页 |
| 第五章 结论与展望 | 第78-80页 |
| 5.1 结论 | 第78-79页 |
| 5.2 展望 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 个人简介 | 第91页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文 | 第91页 |
