| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第15-19页 |
| 1.1 沙棘简介 | 第15-16页 |
| 1.1.1 沙棘籽蛋白的简介与研究进展 | 第15-16页 |
| 1.2 糖尿病研究的进展与现状 | 第16-17页 |
| 1.3 肠道菌群与2型糖尿病的关系 | 第17-18页 |
| 1.4 本课题研究的目的与意义 | 第18-19页 |
| 第二章 沙棘籽蛋白对2型糖尿病小鼠的功效研究 | 第19-32页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.1 材料与实验动物 | 第19页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第19页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.4 实验器具 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-26页 |
| 2.2.1 2型糖尿病模型的建立 | 第20-21页 |
| 2.2.2 小鼠分组及沙棘籽蛋白的灌胃处理 | 第21页 |
| 2.2.3 小鼠体重和空腹血糖(Fasting blood glucose，FBG)测定 | 第21页 |
| 2.2.4 小鼠血清的采集 | 第21页 |
| 2.2.5 小鼠血脂指标的测定 | 第21-25页 |
| 2.2.6 小鼠肝脏组织切片的HE染色 | 第25-26页 |
| 2.2.7 数据处理 | 第26页 |
| 2.3 实验结果与分析 | 第26-31页 |
| 2.3.1 SSP对2型糖尿病小鼠体重(Body Weight, BW)的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.2 不同浓度SSP对2型糖尿病小鼠血糖的影响 | 第27-28页 |
| 2.3.3 SSP对糖尿病小鼠血脂水平的影响 | 第28-29页 |
| 2.3.4 沙棘籽蛋白对小鼠肝脏细胞形态的影响 | 第29-31页 |
| 2.4 本章小结 | 第31-32页 |
| 第三章 沙棘籽蛋白对糖尿病小鼠肠道菌群的干预作用及脂肪酸代谢mRNA检测 | 第32-40页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第32-33页 |
| 3.1.1 实验原料 | 第32页 |
| 3.1.2 实验试剂及微生物培养基 | 第32-33页 |
| 3.1.3 主要仪器与设备 | 第33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-35页 |
| 3.2.1 粪便的采集 | 第33页 |
| 3.2.2 小鼠排泄物pH测定 | 第33页 |
| 3.2.3 小鼠肠道微生物培养 | 第33-34页 |
| 3.2.4 基因引物序列设计 | 第34页 |
| 3.2.5 肝脏组织总RNA提取 | 第34-35页 |
| 3.2.6 cDNA合成 | 第35页 |
| 3.3 结果与分析 | 第35-39页 |
| 3.3.1 SSP对小鼠粪便pH值的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.2 SSP对小鼠肠道菌群的影响 | 第36-38页 |
| 3.3.3 小鼠肝脏脂肪酸代谢mRNA的检测 | 第38-39页 |
| 3.4 本章小结 | 第39-40页 |
| 第四章 SPP对糖尿病小鼠肠道菌群的调节作用 | 第40-48页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第40-43页 |
| 4.1.1 材料 | 第40页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第40页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第40-41页 |
| 4.1.4 样品采集 | 第41页 |
| 4.1.5 样品预处理 | 第41页 |
| 4.1.6 小鼠粪便全DNA的提取 | 第41-42页 |
| 4.1.7 16Sr DNA V3区的PCR扩增 | 第42页 |
| 4.1.8 PCR反应产物的变性梯度凝胶电泳（DEEG） | 第42-43页 |
| 4.1.9 DGGE凝胶回收 | 第43页 |
| 4.2 结果分析 | 第43-46页 |
| 4.2.1 小鼠粪便DNA提取的琼脂糖凝胶电泳结果 | 第43页 |
| 4.2.2 小鼠粪便样本的DGGE图谱 | 第43-45页 |
| 4.2.3 DGGE图谱聚类分析 | 第45-46页 |
| 4.2.4 糖尿病小鼠肠道微生物群落的多样性分析 | 第46页 |
| 4.3 本章小结 | 第46-48页 |
| 第五章 结论与展望 | 第48-49页 |
| 5.1 结论 | 第48页 |
| 5.2 展望 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 攻读硕士学位期间的学术活动及成果情况 | 第56-57页 |
