| 中文摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第12-33页 |
| ·叶片黄化 | 第12-16页 |
| ·叶绿素合成途径 | 第12-13页 |
| ·叶绿素降解途径 | 第13-14页 |
| ·影响叶片黄化的因素 | 第14-15页 |
| ·叶片黄化衰老与糖含量的关系 | 第15-16页 |
| ·ABA 的代谢过程 | 第16-19页 |
| ·ABA 的化学结构 | 第16页 |
| ·ABA 的生物合成 | 第16-17页 |
| ·ABA 的分解代谢 | 第17-18页 |
| ·ABA 与非生物胁迫的关系 | 第18-19页 |
| ·盐胁迫 | 第19-26页 |
| ·盐胁迫对植物的主要影响 | 第19-22页 |
| ·植物对盐胁迫的适应机制 | 第22-24页 |
| ·盐胁迫信号途径 | 第24-26页 |
| ·氨酰-tRNA 合成酶 | 第26-31页 |
| ·氨酰-tRNA 合成酶的结构、分类和氨酰化原理 | 第26-29页 |
| ·氨酰-tRNA 合成酶的亚细胞定位和附加功能 | 第29-31页 |
| ·天冬氨酰-tRNA 合成酶的研究进展 | 第31-32页 |
| ·实验目的 | 第32-33页 |
| 2 材料与方法 | 第33-46页 |
| ·实验材料 | 第33-35页 |
| ·植物材料 | 第33页 |
| ·菌株与质粒 | 第33页 |
| ·酶与各种生化试剂 | 第33页 |
| ·引物 | 第33-35页 |
| ·实验方法 | 第35-46页 |
| ·植物基因组的提取 | 第35页 |
| ·载体构建 | 第35-37页 |
| ·PCR 扩增 | 第35-36页 |
| ·凝胶电泳中 DNA 片段的回收 | 第36页 |
| ·连接反应 | 第36-37页 |
| ·超表达 AtAspRS 表达载体的构建 | 第37页 |
| ·AtAspR 启动子驱动 GUS 报告基因表达载体的构建 | 第37页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第37-38页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第37页 |
| ·大肠杆菌细胞的转化 | 第37-38页 |
| ·大肠杆菌中质粒的提取 | 第38页 |
| ·农杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第38-39页 |
| ·根癌农杆菌 GV3101 感受态细胞的制备 | 第38-39页 |
| ·冻融法转化农杆菌细胞 | 第39页 |
| ·拟南芥的转化及转基因拟南芥的鉴定 | 第39-40页 |
| ·拟南芥的转化 | 第39页 |
| ·转基因拟南芥的鉴定 | 第39-40页 |
| ·RNA 的提取纯化与反转录 | 第40-41页 |
| ·TRIZOL 法提取 RNA | 第40页 |
| ·RNA 的纯化 | 第40-41页 |
| ·RNA 中基因组 DNA 的去除 | 第41页 |
| ·RNA 的反转录 | 第41页 |
| ·实时定量 PCR | 第41-42页 |
| ·GUS 活性测定 | 第42-43页 |
| ·转基因植物 GUS 组织化学染色分析 | 第43页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第43-44页 |
| ·透射电镜样品制备与观察 | 第44-45页 |
| ·植株总糖提取与测定 | 第45-46页 |
| 3 结果与分析 | 第46-61页 |
| ·AtAspRS 的表达模式分析 | 第46-47页 |
| ·超表达 AtAspRS 植株的获得 | 第47-48页 |
| ·AtAspRS 在拟南芥中的功能鉴定 | 第48-57页 |
| ·超表达 AtAspRS 植株的表型分析 | 第48-50页 |
| ·超表达 AtAspRS 植株中叶绿素含量测定 | 第50-51页 |
| ·透射电子显微镜观察超表达 AtAspRS 植株中叶片细胞形态 | 第51-53页 |
| ·超表达 AtAspRS 植株总糖测定 | 第53页 |
| ·超表达 AtAspRS 植株的表达谱分析 | 第53-57页 |
| ·AtAspRS 在种子萌发中的功能鉴定 | 第57-61页 |
| ·超表达 AtAspRS 植株增强对 ABA 和高盐的抗性 | 第57-58页 |
| ·在 ABA 和高盐处理条件下野生型中 AtAspRS 表达量的变化 | 第58-60页 |
| ·超表达 AtAspRS 植株增强对 H2O2的抗性 | 第60-61页 |
| 4 讨论 | 第61-63页 |
| 5 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
