| 摘要 | 第9-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 1 引言 | 第14-25页 |
| 1.1 芥子油苷简介 | 第14页 |
| 1.2 吲哚族芥子油苷研究进展 | 第14-21页 |
| 1.2.1 吲哚族芥子油苷合成途径 | 第14-15页 |
| 1.2.2 吲哚族芥子油苷生物合成的调控基因 | 第15-17页 |
| 1.2.3 吲哚族芥子油苷降解途径 | 第17页 |
| 1.2.4 吲哚族芥子油苷及其降解产物的生物学功能 | 第17-19页 |
| 1.2.5 外界环境对吲哚族芥子油苷代谢的影响 | 第19-20页 |
| 1.2.6 吲哚族芥子油苷的反馈调节 | 第20-21页 |
| 1.3 MYB51研究进展 | 第21-22页 |
| 1.3.1 MYB51对吲哚族芥子油苷合成的调控 | 第21页 |
| 1.3.2 MYB51与其他转录因子的作用 | 第21-22页 |
| 1.3.3 MYB51参与植物防卫物质的合成 | 第22页 |
| 1.4 西兰花吲哚族芥子油苷研究进展 | 第22-23页 |
| 1.5 研究内容与目的意义 | 第23-25页 |
| 1.5.1 本研究的课题来源 | 第23页 |
| 1.5.2 研究内容及技术路线 | 第23-24页 |
| 1.5.3 研究目的意义 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-40页 |
| 2.1 BoMYB51的克隆与生物信息学分析 | 第25-29页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第26-29页 |
| 2.2 BoMYB51在拟南芥中的超量表达及功能分析 | 第29-35页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第29-31页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第31-35页 |
| 2.3 BoMYB51启动子驱动GUS的组织定位表达模式分析 | 第35-38页 |
| 2.3.1 实验材料 | 第35页 |
| 2.3.2 实验方法 | 第35-38页 |
| 2.4 BoMYB51在西兰花中的表达模式分析 | 第38-40页 |
| 2.4.1 实验材料 | 第38页 |
| 2.4.2 实验方法 | 第38-40页 |
| 3 结果与分析 | 第40-60页 |
| 3.1 BoMYB51的克隆与生物信息学分析 | 第40-45页 |
| 3.1.1 BoMYB51mRNA全长的克隆 | 第40-41页 |
| 3.1.2 BoMYB51序列的验证 | 第41-42页 |
| 3.1.3 BoMYB51的生物信息学分析 | 第42-45页 |
| 3.2 BoMYB51在拟南芥中的超量表达与功能分析 | 第45-52页 |
| 3.2.1 BoMYB51超量表达载体的构建 | 第45-46页 |
| 3.2.2 BoMYB51在拟南芥中的超量表达 | 第46-47页 |
| 3.2.3 BoMYB51调控拟南芥吲哚族芥子油苷代谢相关基因的表达 | 第47-49页 |
| 3.2.4 BoMYB51超量表达提高吲哚族芥子油苷含量 | 第49-51页 |
| 3.2.5 BoMYB51调控胼胝质的沉积 | 第51-52页 |
| 3.3 BoMYB51启动子驱动的GUS表达模式分析 | 第52-58页 |
| 3.3.1 ProBoMYB51::GUS载体构建 | 第52-53页 |
| 3.3.2 BoMYB51启动子元件分析 | 第53页 |
| 3.3.3 BoMYB51启动子驱动的GUS表达模式分析 | 第53-55页 |
| 3.3.4 BoMYB51启动子驱动的GUS在不同胁迫下的表达模式分析 | 第55-58页 |
| 3.4 BoMYB51在西兰花中的表达模式分析 | 第58-60页 |
| 3.4.1 BoMYB51在各组织中表达模式分析 | 第58页 |
| 3.4.2 BoMYB51在不同胁迫下的表达模式分析 | 第58-60页 |
| 4 讨论 | 第60-63页 |
| 4.1 BoMYB51对吲哚族芥子油苷合成的调控作用 | 第60页 |
| 4.2 BoMYB51对激素的响应 | 第60-61页 |
| 4.3 BoMYB51对非生物胁迫的响应 | 第61-63页 |
| 5 结论 | 第63-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-76页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第76页 |
